Что можно сделать с сыроежками: Недооцененный гриб. 5 необычных блюд из сыроежек | рецепты | ЕДА

Недооцененный гриб. 5 необычных блюд из сыроежек | рецепты | ЕДА

В Европейской части России в поисках любимого сезонного лакомства уже активно рыщут грибники. Однако они, по большей части, пренебрегают сыроежкой. Вероятно, это происходит из-за того, что этот вид, если не разбираться в его классификации, может быть опасен для здоровья человека. Кроме того, этот гриб достаточно хрупок – донести его до дома в целости бывает проблематично.

Однако те, кто практически подкован в выборе сыроежек, для себя и семьи готовят вкуснейшие домашние блюда, от которых также вряд ли откажутся и самые взыскательные гости.

SPB.AIF.RU собрал пять блюд, которые можно приготовить с использованием незаслуженно обделенного вниманием гриба.

Суп из сыроежек со сливками

Грибной суп, без сомнения, приобретает статус настоящего лакомства при добавлении в процессе приготовления сливок. Этому молочному продукту уделите не меньшее внимание при выборе, чем грибу. Сливки, по возможности, должны быть свежими и натуральными.

Что нужно?

– 600 грамм сыроежек

– 1 луковица

– Сливочное и оливковое масло

– 1 литр молока

– 1 стакан сливок

– 1 морковь

– 2 столовые ложки муки

Как готовить?

Проварите обработанные грибы в подсоленной воде около 15 минут, а затем измельчите сыроежки в блендере или при помощи мясорубки. Далее растопите в кастрюле сливочное масло, выложите туда грибы, а также морковь и луковицу, разрезанные на половинки. Залейте продукты водой и тушите на медленном огне около 40 минут.

Отдельно на сковородке разогрейте оливковое масло, на котором поджарьте муку. В литре свежего молока, смешанного со стаканом воды, разведите эту муку. Смесь поставьте на огонь и доведите до кипения. Уже после переложите в неё только грибы – морковь и лук больше не нужны. Варите всё это в течение 20 минут.

Суп необходимо посолить и добавить стакан жирных сливок. Спустя пять минут можно будет снять блюдо с огня и подать к столу.

Грибные супы – одно из популярнейших блюд в России. Фото: www.globallookpress.com

Жаркое с сыроежками по-домашнему

Блюдо в горшочках, от которого так и веет теплом и уютом, вполне может получиться и из сыроежек. Главное в приготовлении жаркого – самому проникнуться атмосферой и представить, будто творить вы будете не при помощи обычной духовки, а настоящей русской печи.

Что нужно?

– 400 грамм свинины

– 400 грамм сыроежек

– 1 морковь

– Половина луковицы

– 800 грамм картофеля

– 4 столовые ложки растительного масла

– Соль

– Черный перец

– 200 грамм твердого соленого сыра

– 3 дольки чеснока

– 600 мл мясного или овощного бульона

Как готовить?

Промойте мякоть свинины, просушите, а далее нарежьте кубиком. Мясо обжарьте на растительном масле – посолите и поперчите.

Таким же кубиком, как и свинину, нарежьте картофель. Морковь нашинкуйте кружочками, а лук – полукольцами. Помойте обработанные сыроежки и проварите их на умеренном огне не менее 20 минут. Откиньте грибы на дуршлаг, а далее обжарьте на сковороде на небольшом количестве масла.

Возьмите большую миску и смешайте уже все подготовленные компоненты. Далее разложите это по глиняным горшкам и влейте в каждую емкость по 100-150 мл заранее подготовленного мясного или овощного бульона. Сверху добавьте тертый сыр.

Горшочки отправьте в разогретую духовку. Выпекайте жаркое с сыроежками не менее часа при температуре в 220 градусов. Готовность можно проверить на картошке через отведенное время. Если она мягкая – пробуем и наслаждаемся блюдом. Подавать лучше в тех же горшочках.

Грибы в горшочках – уютное и вкусное блюдо. Фото: www.globallookpress.com

Сыроежки, жареные в сметане

Помимо сливок особый вкус сыроежкам, как и многим другим грибам, придает сметана.

Что нужно?

– 400 грамм сыроежек

– 4 стакана сметаны

– 2 головки репчатого лука

– Зелень

– Соль

Как готовить?

Почистите и промойте лук. Переберите сыроежки, очистите и тщательно промойте. Отварите эти грибы в кипящей подсоленной воде около пяти минут, откиньте на дуршлаг – дайте стечь воде.

Лук нарежьте мелким кубиком. Обжарьте его в разогретом масле до золотистого цвета, снимите с огня. Нарежьте сыроежки соломкой, обжарьте на разогретом масле отдельно от лука до готовности. Ранее обжаренный лук добавьте к грибам, влейте сметану, посолите и перемешайте. Доведите блюдо до кипения и держите две минуты, после чего убирайте с огня.

Мелко нарезанный укроп можно добавить к сыроежкам перед подачей на стол.

Сметана придаст сыроежкам особый вкус. Фото: www.globallookpress.com

Тушеные сыроежки

Очень неплохо смотрятся грибы и просто томленые в мясном бульоне. Потушить сыроежки, оказывается, тоже очень вкусно. Однако это блюдо может быть не каждому по вкусу, поэтому для начала можете приготовить его совсем немного – на одну-две порции.

Что нужно?

– 500 грамм сыроежек

– 300 мл мясного бульона

– 2 ст.л растительного масла

– Соль

Как готовить?

Переберите, очистите и промойте грибы. Выложите сыроежки в кастрюлю, залейте водой и поставьте на огонь, после чего доведите до кипения. После откиньте сыроежки на дуршлаг и дайте стечь воде. В сковородке разогрейте растительное масло. В него аккуратно выложите подготовленные грибы. В сыроежки влейте мясной бульон, посолите, перемешайте и накройте крышкой. Сыроежки нужно тушить в течение 30 минут.

Сыроежки могут быть опасны – разбирайтесь в классификации и уделяйте особое внимание обработке гриба. Фото: www.globallookpress.com

Сыроежки, запеченные с рисом и ветчиной

Многие любят подавать грибы с максимальным количеством разнообразных ингредиентов. Иногда такие эксперименты бывают очень удачными. Сыроежки, к примеру, можно приготовить с рисом, крекером и ветчиной одновременно.

Что нужно?

– 400 грамм сыроежек

– 1 томат

– 1 головка репчатого лука

– 1 морковь

– 150 грамм сыра

– 120 грамм ветчины

– Соленый крекер

– 3 ст.л. растительного масла

– 2 ст.л. майонеза

Как готовить?

Обработайте сыроежки, освободите их от ножек. Посыпьте приправами из трав, солью и перцем. Для начинки отварите до готовности рис,  после чего добавьте к нему поджаренные морковь, лук, ножки грибов, мелко порезанную ветчину и пару рубленых долек чеснока. Массу перемешайте и добавьте тертый твердый сыр, нарезанный кубиком томат и дробленые в крошку крекеры. Посолите по вкусу.

Шляпка сыроежки – идеально подойдет для вкусной начинки. Фото: www.globallookpress.com

В шляпки грибов (в идеале, чтобы они были крупными) уложите начинку. Смажьте при помощи кисточки майонезом, сбрызните маслом и запекайте в течение 25 минут в духовке при температуре 190 градусов.

Рецепты заготовки сыроежек на зиму: маринованных, соленых, замороженных

Для тех, кто любит грибы, осень – особая пора, когда можно сделать на зиму замечательные заготовки. Сыроежки занимают почетное место среди других грибов, они хороши тем, что их можно варить, жарить, замораживать, а также солить и мариновать. Все способы заготовки на зиму им покорны! А вот сырыми, несмотря на свое название, сыроежки употреблять не стоит. И если вы как следует потрудитесь в лесу, вкусная и питательная закуска вам гарантирована.

Конечно, предпочтение стоит отдать солению и маринованию сыроежек на зиму. Ведь для того, чтобы насладиться их вкусом, достаточно будет всего лишь достать из заветного местечка баночку, открыть ее и подавать хоть к картошечке, хоть к рису, хоть к гречке. В то время, как над замороженными грибочками придется еще немного поколдовать, прежде чем поставить их на стол.

Обработка сыроежек

Сыроежки довольно хрупкие грибы, которые легко ломаются. Поэтому чистить и мыть их нужно с большой осторожностью. Кто-то предпочитает залить грибы сначала горячей водой, чтобы отошел весь лесной мусор, а потом промыть под струей холодной воды.

Нужно ли снимать пленку со шляпок грибов? Делать это не обязательно, но если у вас есть для этого достаточно времени и терпения, можете заняться этим довольно утомительным процессом. Кстати, без пленки грибы лучше хранятся и выглядят эстетичнее.

Как заморозить сыроежки

Начнем с самого простого – с заморозки этих замечательных даров леса. Для этого нужно знать несколько правил.

  1. Придя домой из леса, тщательно переберите грибы, отрежьте часть плодоножек, испорченные места, после чего замочите примерно на час в холодной воде.
  2. Следующий этап перед заморозкой – бланшировка грибов. Однако после того, как грибы проварятся, не забудьте хорошо слить всю лишнюю воду, иначе в морозилке вода замерзнет, и продукт получится не слишком качественным.
  3. Пакеты лучше всего заполнять доверху, оставляя лишь пространство для того, чтобы их надежно упаковать и освободить от воздуха.
  4. Если вы хотите сохранить форму грибов, заморозьте их сначала на плоском подносе, разложив в один слой, и только после этого можно раскладывать сыроежки по пакетам либо контейнерам.

Сыроежки, как и любые другие грибы, нельзя замораживать несколько раз. Лучше упаковать их в небольшие пакеты, чтобы полностью приготовить все грибы, без остатка.

Соленые сыроежки

Что нужно:

  • 1 кг грибов,
  • 50 гр соли,
  • 1 лавровый листик,
  • несколько зубчиков чеснока,
  • перец горошком.

Как готовить:

  1. Отберите целые, примерно одинакового размера грибы. Замочите на пару часов, а потом хорошенько промойте в новой воде. Отрежьте плодоножки.
  2. В большой кастрюле вскипятите рассол с добавлением соли, выложите туда грибы и варите их минут десять-пятнадцать, не забывая при этом снимать время от времени образующуюся пенку.
  3. Откиньте сваренные грибы на дуршлаг, чтобы стекла вся жидкость.
  4. Выложите грибы в банки, добавьте все остальные ингредиенты.
  5. Поставьте грибы под гнет, которым может служить банка с водой, гантели либо что-то еще тяжелое.
  6. Насладиться незабываемым вкусом грибочков можно уже через две недели.

Маринованные сыроежки

Что нужно:

  • 1 килограмм сыроежек,
  • 1,5-2 столовых ложки соли,
  • 2-3 стакана воды,
  • 3 луковицы,
  • 0,5 чайных ложки сахара,
  • 100 мл уксуса 9%,
  • перец горошком,
  • лавровый лист,
  • гвоздика.

Как готовить:

  1. Очистите, замочите и затем промойте грибочки от лесного сора, отрежьте испорченные части, сложите сыроежки в кастрюлю со слегка подсоленной водой и немного поварите. Откиньте на дуршлаг, подождите, пока стечет вся вода.
  2. Кастрюлю залейте новой водой, поместите туда специи, сахар и соль, половину всего лука. Доведите рассол до кипения, влейте уксус, а затем снова выложите грибы.
  3. Недолго поварите их, потом опустите в кастрюлю оставшуюся часть лука.
  4. Выключите плиту, достаньте из кастрюли сыроежки и разложите их по стерилизованным банкам.
  5. Оставшийся в кастрюле маринад кипятите еще четверть часа, можно чуть дольше, затем залейте им грибы.

Икра из сыроежек

Понадобится:

  • 250 гр грибов,
  • по одной луковице и моркови,
  • 70 мл растительного масла,
  • несколько капель уксуса,
  • соль и перец,
  • любая зелень, которую вы любите.

Как готовить:

  1. Наши грибочки чистим, моем и сортируем по размеру. Будет хорошо, если вы у каждого грибочка снимите кожицу, однако можно вполне обойтись и без этой затратной по времени процедуры.
  2. Подготовленные грибы укладываем в эмалированную посуду, добавляем воду, соль и варим примерно полчаса. Время от времени грибы желательно помешивать и при необходимости снимать образовавшуюся пенку.
  3. О готовности рассола достоверно скажет его прозрачность, а о готовности грибов то, что они опустятся на дно посуды. Когда сыроежки будут полностью готовы, их нужно достать и прокрутить на мясорубке.
  4. Морковь натираем на терке и немного пассеруем, после чего добавляем к перекрученным грибочкам.
  5. Лук шинкуем и обжариваем до мягкости. Тоже перекручиваем через мясорубку и вводим в фарш. Туда же добавляем остальные ингредиенты.
  6. Те, кто любит поострее, могут добавить в икру несколько капелек соуса Табаско или аджики, подойдет и жгучий перец. Однако имейте в виду, что с такими радикальными приправами надо знать меру, чтобы не испортить блюдо.
  7. Получившуюся массу хорошенько перемешиваем и тушим на маленьком огне часа полтора, внимательно наблюдая за тем, чтобы икра не подгорела.
  8. В стерилизованные банки готовую икру выкладываем еще горячей, закатываем и оставляем до полного остывания продукта, а затем убираем в холодильник и оставляем ее там до особого случая или семейного застолья.

Сыроежки – полезные и вкусные грибы, вкусом которых мы можем наслаждаться всю долгую зиму. Для этого вовсе не обязательно выдумывать какие-то уж очень сложные рецепты, достаточно сделать несколько разных заготовок на зиму, чтобы удивлять своих близких и гостей. А то, что сыроежки придутся по вкусу большинству гурманов, не подвергается никакому сомнению. Разнообразив свой стол этим видом грибов, вы получите необходимые нашему организму витамины В2 и РР и море удовольствия!

Как мариновать сыроежки на зиму в банках: простой рецепт с видео

Существует множество несложных рецептов приготовления маринованных сыроежек на зиму. Из этих грибов можно сделать отличную закуску, однако следует помнить, что не все виды сыроежек пригодны для употребления в пищу. Прежде чем заняться сбором и заготовкой сыроежек на зиму в домашних условиях, внимательно изучите специальную литературу, ознакомьтесь с фото грибов или посоветуйтесь с опытными грибниками.

Традиционными способами заготовки съедобных сыроежек считаются засолка и маринование

С рецептами соленых сыроежек, консервированных на зиму, можно познакомиться в статье на нашем сайте.

Несъедобные виды содержат большое количество молочной кислоты, поэтому имеют жгучий, едкий или горький вкус и могут привести к отравлению.

Некоторые виды съедобных сыроежек

Коротко рассмотрим основные признаки самых распространенных разновидностей съедобных сыроежек:

Наименование Характерные признаки
Болотная сыроежка Шляпка красная или с буроватым оттенком, слабо липкая. Пластинки у молодых грибов белые, затем кремовато-желтые. Ножка белая
Буреющая сыроежка Цвет шляпки от пурпурно-красного до коричневого, с полосато-бугорчатым краем. Пластинки светло-кремовые, позже буроватые. Ножка белая или с розовато-фиолетовыми пятнами, буреющая. Запах напоминает селедочный
Зеленоватая сыроежка Мясистая серо-зеленая шляпка с желтоватым или голубоватым оттенком и характерными трещинками. Диаметр шляпки достигает 15 см
Охристая сыроежка Желтая шляпка выпуклой формы с загнутыми вовнутрь краями. Ножка массивная, плотная и сухая. Тонкие пластинки окрашены в кремовый цвет
Пищевая сыроежка Светло-коричневая шляпка диаметром до 9 см иногда имеет розоватый оттенок. В сырую погоду шляпка становится немного липкой
Серая сыроежка Шляпка серая с пурпурным или оливковым оттенком, пластинки светло-кремовые. Ножка белая
Сине-желтая сыроежка Шляпка синеватая или лиловатая, с желтым или буровато-желтым центром. По мере роста из полушаровидной становится плоской. Морщинистая кожица плохо отделяется от мякоти
Цельная сыроежка Плоская темно-коричневая или красно-бурая шляпка с углублением в центре и волнистыми краями. Липкая кожица легко отделяется от мякоти

У некоторых видов съедобных сыроежек есть ядовитые двойники. Посмотрев это видео, вы узнаете, как отличить зеленую сыроежку от бледной поганки:

Подготовка сыроежек к маринованию

Убедившись наверняка, что в вашем лукошке находятся только съедобные грибы, смело приготовьтесь мариновать сыроежки на зиму. Не откладывайте этот процесс надолго, приступайте к первичной обработке не позже, чем через пару часов после сбора. Пролежав «без дела» хотя бы сутки, сыроежки раскрошатся, потемнеют и испортятся.

Важно знать, что сыроежки – хрупкие грибы, которые в сыром виде легко крошатся, поэтому все действия с ними нужно производить очень аккуратно

Эти советы помогут вам правильно подготовить грибы к консервированию:

  • тщательно промойте плодовые тела, очищая их от мусора, грунта, листьев;
  • вырежьте гнилые и поврежденные участки, по возможности постарайтесь аккуратно снять пленку со шляпок;
  • рассортируйте грибы по размеру, крупные сыроежки разрежьте на равные части;
  • приготовьте емкость для вымачивания, заполните ее соленой водой (1 ст. л. поваренной соли и один литр воды) из расчета на каждый килограмм сыроежек;
  • вымачивайте грибы не менее 5 часов, затем промойте их проточной водой;
  • проварите сыроежки трижды по 10 минут, каждый раз сливая воду и тщательно промывая плодовые тела.

Вываривание поможет избавиться от характерной горечи во вкусе. Чтобы маринованные сыроежки получились хрустящими, промывайте их после варки холодной проточной водой.

Лучшие рецепты маринования сыроежек

Так как в результате вымачивания и вываривания грибы в значительной мере теряют свой собственный вкус и аромат, при их мариновании используют стандартные специи и всевозможные пряности в различных комбинациях.

Традиционный рецепт

Начнем с самого простого рецепта маринования сыроежек с применением минимального количества ингредиентов.

Количество порций/объем: 2 л

Ингредиенты:

  • сыроежки – 2 кг;
  • вода – 1 л;
  • уксус столовый, 9% – 50-100 мл;
  • соль каменная – 40 г;
  • сахар – 20 г;
  • перец черный горошком – 4 шт.;
  • гвоздика сухая – 5 шт.;
  • лавровый лист – 4 шт.

Приготовление:

  1. Выполнить первичную обработку сыроежек: вымочить и проварить их.
  2. Добавить в воду соль, сахар, перец, гвоздику, лавровый лист. Довести до кипения.
  3. Влить уксус, прокипятить маринад 2 минуты.
  4. Выложить грибы, проварить 15 минут.
  5. Аккуратно разложить грибы по простерилизованным горячим стеклянным банкам.
  6. Залить сыроежки оставшимся маринадом до самого верха, закатать банки.
  7. После остывания перенести консервацию в прохладное темное помещение или поставить в холодильник.

Маринованные по этому рецепту сыроежки можно приправить растительным маслом и подавать к столу в качестве универсальной закуски.

Пикантные маринованные сыроежки

Если вы являетесь настоящим ценителем острых и насыщенных вкусовых оттенков, этот способ консервирования придется вам по душе. Добавив в маринад чеснок и хрен, вы превратите маринованные грибы в шикарное дополнение к праздничному меню.

Количество порций/объем: 1,5 л

Ингредиенты:

  • сыроежки – 2 кг;
  • вода – 1 л;
  • уксус столовый, 9% – 80 мл;
  • соль каменная – 40 г;
  • сахар – 30 г;
  • перец черный горошком – 20 шт.;
  • корень хрена – 1 шт.;
  • укроп свежий – 2 пучка;
  • чеснок – 3-5 зубчиков;
  • лист черной смородины – 3 шт.

Приготовление:

  1. Промыть листья смородины и укроп проточной водой.
  2. Почистить чеснок и корень хрена. Нарезать тонкими пластинками.
  3. Нашинковать зелень.
  4. Поместить на дно простерилизованных стеклянных банок зелень, чеснок, хрен, перец горошком.
  5. Сверху выложить предварительно вымоченные и проваренные сыроежки.
  6. Приготовить маринад: добавить в воду соль, сахар и уксус, довести до кипения, проварить 7 минут.
  7. Залить грибы, разложенные по банкам, горячим маринадом.
  8. Закрыть капроновыми крышками и после остывания убрать в холодное место на хранение.

Если вам удобнее хранить такую заготовку при комнатной температуре, то банки можно закатать герметично, предварительно простерилизовав их на водяной бане 20-30 минут. Пикантные маринованные сыроежки прекрасно подходят в качестве хорошей сытной закуски к крепким напиткам.

Быстрый рецепт маринования сыроежек

Если вы решите мариновать сыроежки на зиму по этому простому рецепту, то сможете подавать грибы к столу уже через несколько часов после приготовления.

Количество порций/объем: 1 л

Ингредиенты:

  • сыроежки – 1 кг;
  • вода – 1 л;
  • уксус столовый, 9% – 50 мл;
  • лук репчатый – 100 г;
  • соль каменная – 20 г;
  • сахар – 30 г;
  • перец черный горошком – 5 шт.;
  • лавровый лист – 1 шт.;
  • растительное масло – 50 мл.

Приготовление:

  1. Подготовить сыроежки: вымочить и проварить в подсоленной воде.
  2. Нарезать лук полукольцами.
  3. Поставить воду на огонь, довести до кипения.
  4. Добавить в воду соль, сахар, уксус, перец, лавровый лист.
  5. Проварить 5 минут.
  6. Добавить в маринад растительное масло, лук и грибы.
  7. Варить 20 минут на медленном огне, постоянно помешивая.
  8. Разлить продукт по простерилизованным банкам, закрыть капроновыми крышками.

Хранить «быстрые» заготовки рекомендуется в холодильнике не дольше 3-4 месяцев.

Сыроежки, маринованные с зеленью

Добавление нескольких видов зелени делает маринованные грибы очень ароматными и вкусными. Такой продукт можно использовать для приготовления салатов или первых блюд.

Количество порций/объем: 1,5 л

Ингредиенты:

  • сыроежки – 2 кг;
  • вода – 1 л;
  • уксус столовый, 9% – 80-100 мл;
  • укроп, сельдерей, орегано, базилик, тимьян, кинза/другая свежая зелень – по 1 веточке;
  • лук репчатый – 100 г;
  • соль каменная – 50 г;
  • сахар – 30 г;
  • перец черный/душистый горошком – 5 шт.

Приготовление:

  1. Нарезать репчатый лук полукольцами.
  2. Промыть и нашинковать зелень.
  3. Выложить лук и зелень на дно простерилизованных стеклянных банок.
  4. Приготовить маринад: довести воду до кипения, посолить, добавить сахар и перец. Довести до кипения, влить уксус.
  5. Выложить в маринад подготовленные грибы. Проварить 15 минут.
  6. Разложить грибы по стерилизованным банкам и закрыть капроновыми крышками.
  7. Для консервации заготовки необходимо провести дополнительную стерилизацию на водяной бане и после этого закатать герметично.

Ароматные маринованные сыроежки с зеленью готовы!

Рекомендацию по хранению консервированных сыроежек

Приготовив аппетитные маринованные сыроежки, внимательно отнеситесь к хранению продукта. Предлагаем ознакомиться с основными рекомендациями:

  • закупорив банки, позвольте им настояться несколько недель и только после этого открывайте консервацию, однако этот совет не касается «быстрого» рецепта приготовления сыроежек с маслом;
  • храните консервированные грибы в закатанных банках не дольше 1 года в кладовке или подвале, а под капроновыми крышками – 3-4 месяца в холодильнике;
  • если планируете хранить маринованные грибы под капроновыми крышками в холодильнике, добавьте в каждую банку перед закупоркой по 2-3 столовой ложке растительного масла – оно защитит консервацию от появления плесени.

Видео

Рекомендуем ознакомиться с несколькими видеорецептами приготовления маринованных грибов-сыроежек:

Об авторе: Ольга Коваленко

Работает в сфере создания сайтов, пишет познавательные статьи на различные темы. Большую часть времени посвящает профессиональной деятельности, но не забывает о добросовестном ведении домашнего хозяйства. С трепетом относится к цветам, с удовольствием постигает секреты выращивания культур. Убеждена, что при правильной организации труда можно превратить садово-огородные работы в разновидность активного отдыха.

Нашли ошибку? Выделите текст мышкой и нажмите:

Ctrl + Enter

Знаете ли вы, что:

Родина перца – Америка, но основные селекционные работы по выведению сладких сортов проводились, в частности, Ференцем Хорватом (Венгрия) в 20-х гг. XX века в Европе, преимущественно на Балканах. В Россию перец попал уже из Болгарии, потому и получил свое привычное название – «болгарский».

Фермер из Оклахомы Карл Бернс вывел необычный сорт разноцветной кукурузы, получивший название Rainbow Corn («радужная»). Зерна на каждом початке – разных цветов и оттенков: коричневые, розовые, фиолетовые, голубые, зеленые и др. Такого результата удалось добиться путем многолетнего отбора наиболее окрашенных обычных сортов и их скрещивания.

В Австралии ученые начали эксперименты по клонированию нескольких сортов винограда, произрастающих в холодных регионах. Потепление климата, которое прогнозируют на ближайшие 50 лет, приведет к их исчезновению. Австралийские сорта имеют отличные характеристики для виноделия и не подвержены распространенным в Европе и Америке заболеваниям.

Один из самых удобных методов заготовить выращенный урожай овощей, фруктов и ягод – заморозка. Некоторые полагают, что замораживание приводит к потере питательных и полезных свойств растительных продуктов. В результате проведенных исследований ученые выяснили, что снижение пищевой ценности при заморозке практически отсутствует.

В помощь садоводам и огородникам разработаны удобные приложения для Android. В первую очередь это посевные (лунные, цветочные и т. д.) календари, тематические журналы, подборки полезных советов. С их помощью можно выбрать день, благоприятный для посадки каждого вида растений, определить сроки их созревания и вовремя собрать урожай.

Компост – перепревшие органические остатки самого разного происхождения. Как сделать? В кучу, яму или большой ящик складывают все подряд: кухонные остатки, ботву огородных культур, скошенные до цветения сорняки, тонкие веточки. Все это переслаивают фосфоритной мукой, иногда соломой, землей или торфом. (Некоторые дачники добавляют специальные ускорители компостирования.) Накрывают пленкой. В процессе перепревания кучу периодически ворошат или протыкают для притока свежего воздуха. Обычно компост «зреет» 2 года, но с современными добавками может быть готов и за один летний сезон.

«Морозостойкие» сорта садовой земляники (чаще просто – «клубника») так же нуждаются в укрытии, как и обычные сорта (особенно в тех регионах, где бывают бесснежные зимы или морозы, чередующиеся с оттепелями). У всей земляники корни поверхностные. Это означает, что без укрытия они вымерзают. Уверения продавцов в том, что земляника «морозостойкая», «зимостойкая», «переносит морозы до −35 ℃» и т. д. – обман. Садоводы должны помнить о том, что корневую систему земляники еще никому не удавалось изменить.

И перегной, и компост по праву являются основой органического земледелия. Их присутствие в почве значительно увеличивает урожай и улучшает вкусовые качества овощей и фруктов. По свойствам и внешнему виду они очень похожи, но путать их не стоит. Перегной – перепревший навоз или птичий помет. Компост – перепревшие органические остатки самого разного происхождения (испортившаяся пища с кухни, ботва, сорняки, тонкие веточки). Перегной считается более качественным удобрением, компост более доступен.

Перегной – перепревший навоз или птичий помет. Готовят его так: навоз складывают в кучу или бурт, переслаивая его опилками, торфом и огородной землей. Бурт накрывают пленкой, чтобы стабилизировать температуру и влажность (это нужно для повышения активности микроорганизмов). Удобрение «созревает» в течение 2-5 лет – в зависимости от внешних условий и состава исходного сырья. На выходе получается рыхлая однородная масса с приятным запахом свежей земли.

суп, салат, котлеты, икра, вареники

Добавить в избранное

Сыроежки являются большим родом грибов, в который входит более 190 видов. Съедобных из них не более 30. Но из них можно приготавливать много вкусных блюд для повседневного стола: супы, салаты, котлеты и горячие закуски. Подробнее о том, как правильно обрабатывать и готовить сыроежки, читайте в материале.

ПоказатьСкрыть

Выбор и подготовка ингредиентов

Чаще всего грибы рода Russula встречаются рядом с дубами, прикрытые небольшим количеством опавшей листвы. Бывают они нескольких цветов: жёлтые, коричневые, зелёные, красные, сизые. Грибники советуют выбирать жёлтые, хотя съедобными могут быть и экземпляры других расцветок.

Принесённые домой сыроежки обрабатывают сразу после сбора:

  1. Прежде всего, грибы нужно очистить от листьев и хвои с помощью мягкой щётки.
  2. Затем с помощью тыльной стороны ножа удалить со шляпок плёнку. Она источник горечи, поэтому её желательно снять. Но сделать это можно не всегда. Если собранные вами грибы слишком хрупкие, пробланшируйте их в горячей воде, чтобы не снимать плёнку.
  3. Очищенные грибы замачивают на 1 час в холодной солёной воде. Если есть подозрение, что в них могут быть жучки, добавьте в воду больше соли (из расчёта 1 ст. л. на 1 л воды).
  4. Слейте рассол, извлеките сыроежки и промойте чистой водой.
  5. Теперь нужно отварить их для дальнейшего использования. Время варки — 40 минут. Воду в кастрюле можно не подсаливать, поскольку вы замачивали их в солёном растворе.
  6. Во время кипения образуется пена, которую нужно снимать шумовкой.
  7. В отвар кладут специи: чёрный перец горошком, лавровый лист или другие, для того, чтобы придать блюду дополнительный вкус и аромат.

Важно! Если вы решили собрать сыроежки, помните, что они слишком хрупкие. Чтобы они не раскрошились при готовке, обдайте их крутым кипятком.

Рецепты приготовления блюд из сыроежек

Грибные блюда бывают самыми разными. Среди рецептов: супы, жаркое с грибами, вареники, салаты из отварных грибов, пироги, грибные соусы. Их можно подавать к картофельному пюре, макаронам, мясному стейку.

Грибной суп

2 л 40 минут

Шаги

10 ингредиентов

  • нежирная курица или другое мясо

    400 г

  • картофель

    250 г

  • подсолнечное масло

    50–70 мл

  • перец чёрный горошком

    4–5 шт.

  • лук репчатый

    2 головки

  • лавровый лист

    3 шт.

Пищевая ценность на 100 г:

Калории

112 ккал

  1. Грибы нужно аккуратно почистить и вымыть.
  2. Подготовить кастрюлю для варки. Налить туда воду. Подсолить. Поставить её на средний огонь. Когда закипит, продолжать отваривать в течение 40 минут, постоянно снимая пену. Готовые грибы извлечь из отвара. Слегка обсушить. Получившийся отвар можно вылить.
  3. В отдельной кастрюле сварить бульон из мяса, соли и специй.
  4. Очистить овощи. Нарезать.
  5. Поставить сковороду на огонь. Выложить в неё масло и растопить. Всыпать нарезанный полукольцами лук. Обжарить его в течение пары минут. Добавить натёртую на тёрке морковь и продолжать жарку ещё 3 минуты.
  6. Соединить готовый бульон и овощи. Закрыть блюдо крышкой и продолжать отваривать 20 минут.
  7. Соединить с грибами. Добавить мелко нарубленную зелень и специи. Готовить ещё 5 минут.
  8. Подавать, посыпав травами.

Знаете ли вы? Польза сыроежек для организма обеспечена высоким содержанием в них витаминов: B1 (приводит в норму нервную систему, снимает стресс), B2 (обеспечивает здоровье ногтей, кожи, волос), С (усиливает иммунитет), E (защищает клетки) и PP (обеспечивает работу системы кровообращения).

Салат с сыроежками

350 г30 минут

Шаги

7 ингредиентов

  • отварное яйцо

    2 шт.

  • петрушка свежая

    1 вет.

  • подсолнечное или оливковое масло

    25–30 г

  • столовый уксус

    2 ст. л. (можно сок лимона)

Пищевая ценность на 100 г:

Калории

22 ккал

  1. Подготовленные грибы обдать кипятком или отварить в подсоленной воде. Время отваривания — 30 минут. Нарезать полосками.
  2. Сварить вкрутую куриные яйца. Снять скорлупу. Нарезать.
  3. Соединить яйца с грибами.
  4. Для заправки салата соединить в отдельной ёмкости остальные компоненты. Размешать до однородности.
  5. Добавить заправку в салат.
  6. Посыпать блюдо мелко нарезанной петрушкой.

Знаете ли вы? Сыроежка чешуйчатая (Russula virescens) гриб с зелёной шляпкой, мясистой ножкой и мякотью с ореховым вкусом. Это особенно вкусный вид, считающийся лучшим среди сыроежек.

Котлеты с грибами

3 кг 1 час

Шаги

13 ингредиентов

  • говяжий фарш

    2 кг

  • чеснок

    5–6 зуб.

  • панировочные сухари

    100 г

  • сметана

    2 ст. л.

  • смесь пряных трав

    2 ч. л.

  • чёрный молотый перец

    2 ч. л.

  • оливковое масло

    5 ст. л.

  • петрушка мелко нарезанная

    2 ст. л.

Пищевая ценность на 100 г:

Калории

110 ккал

  1. Измельчите панировочные сухари до мелкой крошки.
  2. В большой миске соедините измельчённые сухари, говядину, чеснок, яйца, сметану, травы, соль и перец. Вымешайте до однородной массы.
  3. Поставьте подготовленные грибы вариться на 30 минут. Воду обязательно посолите.
  4. Затем извлеките грибы из отвара и нарежьте их.
  5. Возьмите крупную сковороду или сотейник. Поставьте на средний огонь. Разогрейте в ёмкости масло. Обжарьте котлеты с 2-х сторон до образования корочки.
  6. На отдельной сковороде обжарьте грибы до образования корочки.
  7. В эту же сковороду добавьте масло сливочное, а когда оно растает, соедините с мукой. Готовьте 2 минуты, взбивая. Влейте бульон. Соедините со сметаной и доведите соус до кипения. Тушите 8 минут. Заправьте солью и перцем по вкусу. При желании, посыпьте нарезанной петрушкой перед подачей на стол.
  8. Подавайте котлеты вместе с картофельным пюре, политыми соусом с грибами.

Важно! Признаком готовности грибов при отваривании является то, что они опускаются на дно кастрюли.

В духовке

1 кг5,5 часов

Шаги

15 ингредиентов

  • оливковое масло

    2 ст. л.

  • лук репчатый

    1 шт.

  • овсянка быстрого приготовления

    100 г

  • твёрдый сыр

    400 г

  • панировочные сухари

    150 г

  • чёрный перец

    1/4 ч. л.

  • кайенский красный перец

    1/2 ч. л.

  • томатный соус

    300 г

Пищевая ценность на 100 г:

Калории

79,7 ккал

  1. Очищенные сыроежки необходимо предварительно отварить. Для этого поставьте на огонь кастрюлю с водой. Добавьте 2 ст. л. соли на каждый литр воды и отваривайте около 20–30 минут. Извлеките грибы и нарежьте кусочками.
  2. В сотейнике или глубокой сковороде нагрейте оливковое масло. Погрузите в него грибы в один слой и обжаривайте, пока не испарится избыточная влага. Уменьшите огонь. Продолжайте готовить ещё 5 минут до появления золотистой корочки.
  3. Нарежьте лук полукольцами. Соедините его с грибами. Продолжайте тушить ещё 5 минут, пока он не станет мягким.
  4. Смешайте овсянку быстрого приготовления с грибной смесью. Добавьте натёртый на тёрке сыр, панировочные сухари, петрушку и 1 яйцо. Заправьте солью и специями. Тщательно вымешайте и добавьте второе яйцо. Смесь должна держаться вместе, не растекаясь.
  5. Поставьте приготовленный фарш в холодильник на 4 часа для того, чтобы улучшить вкус и текстуру блюда.
  6. Разогрейте духовку до +230°С. Покройте противень пергаментом.
  7. Сформируйте небольшие котлетки. Выпекайте до тех пор, пока они не станут золотисто-коричневыми. Время запекания — 12–15 минут.
  8. Доведите томатный соус до кипения. Уменьшите огонь и аккуратно покройте фрикадельки соусом. Продолжайте выпекать ещё 40 минут.
  9. Выложите на блюдо и украсьте посыпанным сыром и мелко нарубленной зеленью петрушки.

Важно! Маринованные сыроежки будут готовы намного раньше, чем другие виды грибов. Есть их можно на второй день после приготовления. Заправьте растительным маслом, посолите и подавайте блюдо к столу, посыпав приправами.

Грибная икра

600 г1 час

Шаги

9 ингредиентов

  • оливковое масло

    3 ст. л.

  • лимонный сок

    3 ст. л.

  • перец чёрный молотый

    1 ч. л.

Пищевая ценность на 100 г:

Калории

134 ккал

  1. Очищенные грибы замочите на полчаса в кипящей солёной воде. Нарежьте кусочками.
  2. Поставьте сковороду на огонь. Разогрейте в ней масло. Погрузите в него нарезанный кубиками репчатый лук, измельчённый чеснок и обжаривайте до мягкости около 8 минут.
  3. Добавьте грибы, установите средний огонь и обжаривайте, пока они не подрумянятся, примерно 10 минут.
  4. Снимите с огня. Заправьте лимонным соком и сметаной. Приправьте солью и перцем, украсьте укропом и подавайте к столу.

Важно! Любителям картофеля с грибами можно порекомендовать жарить картофель отдельно и добавлять в него сыроежки, уже обжаренные на другой сковородке. Это позволит контролировать степень готовности таких разных по текстуре продуктов.

В кляре

600 г40 минут

Шаги

7 ингредиентов

Видео-рецепт
  • мука пшеничная

    100 г

Пищевая ценность на 100 г:

Калории

205 ккал

  1. Очистить грибы. Приготовить солевой раствор (2 ст. л. соли на 1 л воды). Замочить в нём грибы.Почистить ножку и снять плёнку со шляпки.
  2. Подготовленные грибы отварить до готовности. Отваривание можно заменить бланшированием. Для этого очищенные грибы нужно перемешать с солью. Подготовленные таким образом сыроежки залить крутым кипятком и оставить на 7 минут.
  3. Взбить яйцо, добавив в него соль и перец.
  4. Каждый гриб окунуть в молоко, затем обвалять в подсоленной муке, а затем — во взбитом яйце.
  5. Грибы в панировке выложить на тарелку.
  6. В сковороду налить большой слой масла. Разогреть. Опустить в масло грибы. Лучше размещать их в один слой. Тогда они будут именно жариться, а не тушиться. Время приготовления — 12 минут. Блюдо подавать к столу горячим, украсив зеленью.
В кляреВидео-рецепт: В кляре

Важно! Собирая сыроежки для обжаривания в кляре, берите грибы с плотной структурой, которые не развалятся, например, буро-коричневую сыроежку.

Вареники с грибами

600 г30–35 минут

Шаги

7 ингредиентов

  • масло кунжутное

    30 мл

  • тёплая вода

    150 г

Пищевая ценность на 100 г:

Калории

183 ккал

  1. Очистите грибы. Залейте их в кастрюле солёным кипятком на полчаса. Извлеките и обсушите грибы. Мелко нарежьте.
  2. В сотейнике или кастрюле нагрейте кунжутное масло. Добавьте измельчённый чеснок и тушите 1 минуту.
  3. Опустите в масло грибы и обжаривайте ещё 2–3 минуты до готовности. Приправьте солью и перцем.
  4. Подготовьте рабочую поверхность (например, разделочную доску).
  5. Для приготовления теста смешайте в большой миске муку и воду. Замесите тесто. Оно должно получиться слегка липким, но налипать на руках не должно.
  6. Накройте его полиэтиленовой плёнкой и оставьте минимум на 20 минут.
  7. Посыпьте рабочую поверхность мукой. Выньте тесто из плёнки и раскатайте. Используйте стакан или чашку круглой формы, чтобы вырезать кружки. Каждый из них должен весить около 9–10 г.
  8. Наполните каждую заготовку начинкой. Запечатайте пальцами. Чтобы вареники не пересыхали, можно положить их под плёнку.
  9. Отваривайте партиями в подсоленной воде. Время готовки — 10 минут.
  10. Вареники с грибами можно не только отваривать, но и обжаривать. Для этого понадобится сковорода. Разогрейте в ней растительное масло и выложите вареники в один слой. Готовьте 2–3 минуты до образования золотистой корочки. Затем сложите их в кастрюлю, добавьте 50 г воды и тушите под паром в течение 5 минут.
  11. Подавайте вместе с чесночным соусом.

Знаете ли вы? По-латыни сыроежка звучит как «Russula», что значит «красный».

Сыроежки — довольно вкусные грибы, которые прекрасно подходят для приготовления разнообразных типов блюд. Для того, чтобы они получались вкусными, помните, что сыроежки нужно либо отваривать, либо бланшировать, чтобы удалить горечь. И обязательно брать в лесу только те виды, в съедобности которых вы уверены.

Как готовить на зиму сыроежки


Рецепты сыроежек на зиму в банках: домашние заготовки

Энциклопедия «Гриб-Инфо»ПереработкаГрибы на зимуКак приготовить сыроежки на зиму в банках: простые рецепты

Сыроежки – вкусные и питательные грибы, которые в рейтинге «лесных даров» занимают не последнее место. Из них можно приготовить множество различных блюд и сделать вкуснейшие домашние заготовки на зиму.

Большинство хозяек предпочитают закрывать сыроежки на зиму в банках – как это сделать? В этой статье мы расскажем вам о простых и вкусных рецептах солёных и маринованных грибов. Такая закуска прекрасно дополнит не только повседневное меню, но и праздничное застолье.

Подготовка сыроежек к маринованию

Перед тем как приступать к маринованию и засолке сыроежек на зиму в банках, необходимо провести подготовку:

  • Для начала нужно перебрать принесённый урожай, отбросив все испорченные экземпляры.
  • Удалить ножом места с большими скоплениями мусора и налипшей грязи, а также срезать нижние части ножек, затем погрузить плодовые тела в воду.
  • Снять с каждой шляпки плёнку и хорошенько промыть грибы в воде.
  • Маленькие экземпляры оставить целыми, а крупные порезать на несколько частей.
  • Выложить грибы в кастрюлю, залить подсоленной водой и довести до кипения.
  • Проварить 20-30 мин, не забывая при этом убирать появившуюся пенку, переложить на дуршлаг или кухонное полотенце, чтобы убрать лишнюю жидкость.

Классический рецепт соления грибов сыроежек на зиму в банках

Солёные сыроежки нравятся всем без исключения, да и на праздничном столе без них бывает очень «скучно». А под рюмочку сорокаградусной – это идеальная закуска! Предлагаем вам классический рецепт соления грибов сыроежек на зиму в банках.

  • Сыроежки (отварить) – 1,5 кг;
  • Соль – 70 г;
  • Укроп свежий – 1 небольшой пучок;
  • Лавровый лист – 3-4 шт.;
  • Смородиновые и/или вишнёвые листья – 10 шт.;
  • Зёрна чёрного перца – 10-15 шт.;
  • Чеснок – 4-5 зубочков.

Чеснок нарезать слайсами, а укроп мелко измельчить.

  1. Свежие листья смородины и/или вишни хорошо вымыть и обсушить, оставив их в проветриваемом помещении.
  2. Банку объёмом 3 л следует простерилизовать и тоже высушить.
  3. На дно банки выложить часть свежих листьев и 20 г соли, сверху распределить слой грибов.
  4. Каждый слой плодовых тел должен быть пересыпан солью, чесноком, укропом, лавровым листом и чёрным перцем.
  5. Накройте сыроежки несколькими смородиновыми листьями, положите сверху марлю и поставьте груз.
  6. Через неделю-другую проверьте закуску на готовность. Подавайте блюдо, заправив его растительным маслом и добавив полукольца репчатого лука.

Маринование сыроежек на зиму в банках

Как ещё приготовить сыроежки на зиму в банках? Большинство хозяек предпочитают мариновать данный продукт с различными специями и пряностями. Предлагаем посмотреть классический вариант консервации этих плодовых тел путём маринования.

  • Сыроежки отваренные – 3 кг;
  • Сахар – 20 г;
  • Соль – 40 г;
  • Уксус 9% – 7-8 ст. л.;
  • Лавровый лист – 5 шт.;
  • Гвоздика – 3 шт.;
  • Перец чёрный и душистый (горошек) – по 7-10 шт.;
  • Вода очищенная – 1 л.

В кастрюле с водой соединяем соль, сахар, лавровый лист, гвоздику и перец.

Доводим до кипения на огне и вливаем уксус, варим 3 мин.

Затем в маринад закладываем грибы и продолжаем варить 10 мин.

Подготовленные стерилизованные банки заполняем грибами и заливаем маринадом, удалив предварительно из него лавровый лист.Закатываем или закрываем плотными капроновыми крышками, а после остывания выносим в подвал.

Как закрывать сыроежки с хреном на зиму в банках

Данный рецепт сыроежек, заготовленных на зиму в банки, понравится тем, кто ценит в закусках насыщенный и пикантный вкус.

  • Сыроежки отваренные – 2 кг;
  • Вода – 1,5 л;
  • Уксус (9%) – 3 ст. л.;
  • Корень хрена – 1 шт.;
  • Соль – 1,5 ст. л.;
  • Сахар – 2 ч. л.;
  • Чёрный перец (горошек) – 15 шт.
  • Чеснок – 3 зубочка.
  1. Корень хрена натираем на тёрке, чеснок измельчаем пластинками.
  2. Выкладываем ингредиенты в стерилизованные банки и делаем маринад.
  3. В воде соединяем соль, сахар, перец и уксус, доводим до кипения и выкладываем отваренные грибы.
  4. Провариваем 15 мин и раскладываем массу по банкам поверх хрена и чеснока.
  5. Закатываем и выносим на хранение в прохладное помещение.

Как готовить сыроежки с луком на зиму в банках

Вкусный и интересный рецепт, показывающий, как готовить сыроежки на зиму в банках.

Попробуйте замариновать грибы таким способом, и вам непременно понравится результат!

  • Сыроежки – 3 кг;
  • Лук – 0,5 кг;
  • Вода – 3 л;
  • Соль – 2 ст. л.;
  • Сахар – 2 ч. л.;
  • Лавровый лист и гвоздика – по 3 шт.;
  • Уксус 9% — 200 мл.
  1. Очищенные плодовые тела нужно предварительно отварить 20 мин в подсоленной воде, затем промыть под краном.
  2. Готовим маринад: в воде из рецепта соединяем соль, сахар, лаврушку, гвоздику и порезанный на 4 части репчатый лук.
  3. Ставим маринад на плиту, доводим до кипения и добавляем сыроежки, варим 10 мин.
  4. В конце добавляем уксус, а через минуту выключаем огонь.
  5. В стерилизованные банки выкладываем грибы вместе с маринадом и закатываем.
  6. После остывания выносим для хранения в подвал или погреб.

Поделиться статьей:

grib-info.ru

Как мариновать сыроежки на зиму

К сыроежкам многие относятся с пренебрежением, считают их малопригодными для употребления в пищу грибами. Все дело в том, что сыроежки бывают разных сортов: одни настолько горьки, что на самом деле никакой ценности не представляют, другие же, напротив, становятся основой приготовления вкусных блюд, заготовок. Особенно высоко ценятся гурманами маринованные сыроежки, которые на зиму заготовить будет относительно несложно, если знать как.

Особенности приготовления

Как уже было сказано, в некоторых сортах сыроежек так много молочной кислоты, что для консервации они не годятся. Если вы не заядлый грибник и не можете отличить съедобные сыроежки от несъедобных визуально, есть смысл попробовать их на язык: непригодные для еды будут сильно горчить. Отобрав подходящие для маринования грибы, нужно их правильно подготовить.

  • В первую очередь сыроежки следует хорошо отмыть, очистив от прилипших листочков, хвоинок, травинок. Одновременно придется удалить все гнилые и червивые участки, как можно ближе к шляпке срезать ножки.
  • Пленку, покрывающую шляпку сыроежки, можно оставить, но это может негативно сказаться на сохранности консервов. Поэтому при подготовке сыроежек к маринованию пленку лучше снять, хоть занятие это и непростое.
  • Очищенные грибы нарезают одинаковыми кусками, при этом самые маленькие можно оставить целыми.
  • Следующий этап обработки, который нельзя миновать, – вымачивание или вываривание. Вымачивать сыроежки нужно в течение 5 часов в подсоленной воде (на килограмм сыроежек надо взять два литра воды и столовую ложку соли). После вымачивания останется промыть сыроежки под струей воды. Этот процесс позволит удалить лишнюю горечь. Вываривание служит этой же цели, но помогает избавиться от горечи быстрее: сыроежки отваривают три раза по 10 минут, каждый раз сливая воду и промывая грибы. Вываривание не менее эффективно, чем вымачивание, но маринованные грибы при выборе этого способа не будут хрустящими.
  • Последняя стадия подготовки сыроежек – отваривание их до готовности. Их варят, постоянно снимая образующуюся пену, до тех пор, пока каждый гриб не опустится на дно.

Читать ещё  Маринованные моховики на зиму

После этого останется только выбрать рецепт приготовления маринованных сыроежек на зиму.

Классический рецепт маринованных сыроежек

Состав:

  • сыроежки (отваренные) – 2 кг;
  • вода – 1 л;
  • уксус столовый (9-процентный) – 150 мл;
  • соль каменная – 40 г;
  • сахар-песок – 10 г;
  • лавровый лист – 4 шт.;
  • перец душистый горошком – 10 шт.;
  • гвоздика – 5 шт.

Способ приготовления:

  • Простерилизуйте банки, подготовьте крышки. Из указанного в рецепте количества ингредиентов выйдет как минимум две литровых банки, но лучше подстраховаться и приготовить банки общей емкостью 2,5 литра.
  • В кастрюлю налейте литр воды, всыпьте в нее соль и сахарный песок, положите перец, гвоздику и лавр.
  • Доведите воду до кипения и прокипятите 5 минут.
  • Влейте уксус, размешайте, кипятите еще 2 минуты.
  • Положите в маринад подготовленные грибы. Варите их четверть часа.
  • Разложите по стерилизованным банкам, залейте кипящим маринадом.
  • Закройте металлическими или капроновыми крышками. Если выбраны полиэтиленовые, то хранить заготовку зимой можно будет только в холодильнике или в подвальном помещении, где температура не поднимается выше 8 градусов. Закатанные металлическими крышками банки после остывания можно поставить в кладовку, где температура держится не выше 16 градусов.

Сыроежки, маринованные по классическому рецепту, универсальны – они придутся по вкусу каждому. Подавать их нужно с подсолнечным маслом, в идеале – нерафинированным. Еще лучше будет, если порезать в закуску немного чеснока.

Сыроежки в пикантном маринаде

Состав:

  • сыроежки (отваренные) – 2 кг;
  • вода – 2 л;
  • укроп – 5 зонтиков;
  • чеснок – 5 зубчиков;
  • смородиновые листья – 5 шт.;
  • хрен (корень) – 1,5–2 см;
  • соль – 40 г;
  • сахар-песок – 10 г;
  • черный перец горошком – 10 шт.;
  • уксусная эссенция (70-процентная) – 20 мл.

Способ приготовления:

  • Простерилизуйте 5 пол-литровых банок и подходящие к ним крышки.
  • Разрежьте зачищенный хрен на 5 частей.
  • На дно каждой банки положите по одному зонтику укропа, одному смородиновому листу, кусочку хрена, зубчику чеснока, по паре горошин перца.
  • Отваренные сыроежки разложите по банкам примерно по плечики, утрамбуйте ложкой.
  • Вскипятите воду, положите в нее соль, сахар и прокипятите в течение 10 минут.
  • Влейте в маринад уксусную эссенцию, размешайте.
  • Кипящим маринадом залейте грибы (им нужно заполнить банки до самых краев).
  • Сразу же укупорьте стерилизованными крышками. Как и в прошлом рецепте, закрывать банки можно и полиэтиленовыми крышками, но в этом случае хранить заготовку зимой можно только в холодильнике.

Читать ещё  Баклажаны по-грузински на зиму

Закуска по этому рецепту получается пряной, ароматной, сами маринованные сыроежки имеют пикантный, слегка острый вкус.

Сыроежки, маринованные с луком

Состав:

  • сыроежки (сырые) – 2 кг;
  • вода – 3 л;
  • уксус столовый – 150 мл;
  • лук репчатый – 0,5 кг;
  • лавровый лист – 5 шт.;
  • душистый перец горошком – 5 шт.;
  • гвоздика – 3 шт.;
  • сахар-песок – 10 г;
  • соль – 50 г.

Способ приготовления:

  • Помойте, простерилизуйте две литровые банки или 4 пол-литровые. Вымойте и прокипятите капроновые крышки. Можно использовать и металлические, но хранить закуску все равно придется только в прохладном месте.
  • Отварите предварительно подготовленные грибы. В двух литрах воды перед этим растворите две чайные ложки соли. Отваривая, не забывайте снимать пену. Когда грибы опустятся вниз, откиньте их на дуршлаг, дайте стечь жидкости.
  • Сварите маринад, вскипятив литр воды и положив в нее разрезанные на 2–4 части луковицы, соль, сахар, перец, гвоздику, листья лавра.
  • Прокипятите маринад 10 минут, влейте в него уксус и прокипятите еще минуту.
  • Разложите по банкам сыроежки, залейте маринадом.
  • Закройте банки крышками, подождите, пока они остынут при комнатной температуре, уберите в холодильник.

Если замариновать сыроежки по этому рецепту, то они не получатся упругими и хрустящими, но будут нежными на вкус и аппетитно пахнущими, особенно если перед подачей к столу их смешать со свежим луком и нерафинированным подсолнечным маслом.

Маринованные на зиму сыроежки можно хранить всю зиму, но только в прохладном помещении. Они хороши в качестве закуски и как дополнение к основному блюду, прекрасно заменяют мясо и гармонируют с ним.

onwomen.ru

Сыроежки на зиму: фото, рецепты приготовления грибов с пошаговой инструкцией

Энциклопедия «Гриб-Инфо»ПереработкаГрибы на зимуЗаготовка сыроежек на зиму: рецепты приготовления грибов

В лиственных и хвойных лесах можно в больших количествах встретить красивые и вкусные грибы сыроежки, хотя некоторые грибники не торопятся их срывать так как надеются встретить более благородных их сородичей. Такое отношение к представителям этого грибного семейства является совершенно незаслуженным, так как по своим вкусовым качествам и энергетической ценности от не уступают других, более популярным видам грибов. Из них можно приготовить множество вкусных блюд как для повседневного или праздничного стола. Приготовление сыроежек на зиму позволяет сохранить их вкус и свежесть на долгие месяцы и дождаться следующего урожая.

Существует много разновидностей сыроежек, которые отличаются друг от друга не только цветом шляпок, но и вкусом. Это нужно учитывать при выборе способа обработки, так как одни практически лишены горечи, появляющейся в грибах из-за скопления молочной кислоты, а другие, наоборот настолько горьки, что в вареном и жареном виде практически несъедобны. Такой сорт сыроежек требует вымачивания в воде с солью. Кушать их при такой обработке можно будет уже через одну-две недели.

Некоторые отчаянные и вечно спешащие любители грибов уверены, что некоторые разновидности сыроежек можно употреблять в пищу уже на следующий после засолки день. Однако такое утверждение является ошибочным, летальный исход, конечно, после такой трапезы маловероятен, однако, тошнота, слабость, головокружение и прочие признаки отравления обеспечены.

Чтобы избежать подобных неприятностей нужно сыроежки правильно готовить. Их можно солить холодным или горячим способом, жарить и готовить из них паштет. Попробуем разобраться, как готовить сыроежки на зиму. Рецепты приготовления с фото приведены ниже.

Холодная засолка сыроежек на зиму

Заготовить грибы сыроежки на зиму поможет рецепт холодной засолки.

Ингредиенты:

  • 5 кг сыроежек;
  • 1 л воды;
  • 0,5 кг соли;
  • 5 соцветий укропа;
  • 10 зубчиков чеснока;
  • листья смородины.

Приготовление:

  1. Сыроежки аккуратно промыть и замочить на 2 суток в холодной воде, которую нужно трижды в день менять (утром, в обед и вечером). Последний раз нужно их замочить в подсоленной воде на 6-8 часов. На 5 л воды нужно добавить 100 г соли;
  2. Соцветия укропа нужно разобрать на веточки, чеснок почистить и нарезать тонкими пластинами;
  3. Смородиновые листья промыть и выложить на дно кастрюли;
  4. Вымоченные грибы разделить на 10 частей и выкладывать на дно кастрюли, шляпками вниз, перекладывая каждый слой чесночными пластинами и небольшим количеством укропа и пересыпая двумя столовыми ложками соли;
  5. После того как все части грибов уложены, нужно залить их 1 литром прохладной воды, накрыть марлей, сверху придавить деревянным диском, тарелкой или крышкой меньшего диаметра и установить гнет;
  6. Емкость поставить в прохладное место, к котором температура не поднимается выше 6-7 °С на 5 дней.

По истечении этого времени можно сверху докладывать слои свежих, предварительно вымоченных грибов и также пересыпать их солью.

Употреблять в пищу приготовленные таким способом сыроежки можно через две недели после того, как в емкость был заложен последний слой грибов. В этот же период времени можно переложить их в банки, залить рассолом, закрыть капроновыми крышками и отправить на хранение в холодильник.

Горячий способ приготовления сыроежек на зиму

Также есть рецепт приготовления грибов сыроежек на зиму горячим способом.

Ингредиенты:

  • 1 кг сыроежек;
  • 1,5 л воды;
  • 8 душистых горошин;
  • 100 г листьев смородины;
  • 4 бутона гвоздики;
  • 50 г листьев вишни;
  • соль.

Приготовление:

Сыроежки помыть почистить замочить на сутки в холодной воде, затем промыть

Переложить в кастрюлю и добавить 1 л воды

Закипятить воду и положить в рассол перец, гвоздику и пряные листья;

Варить на медленном огне, снимая с поверхности воды пенку до тех пор, пока грибы не опустятся на дно, а рассол не станет прозрачным.После этого необходимо разложить сыроежки по стерильным банкам, залить кипящим рассолом и закатать. Хранить их следует в прохладном помещении, например в погребе или подвале. Готовыми к употреблению они станут уже через 10 дней после укупорки.

Сыроежки на зиму с хреном и чесноком

Заготовка сыроежек на зиму и рецепты консервации и готовки грибов являются очень актуальной и обсуждаемой темой, поэтому способов приготовления этих вкусных грибочков существует огромное количество.

Очень вкусными и ароматными получаются сыроежки с хреном и чесноком.

Ингредиенты:

  • 1 кг грибов;
  • 1,5 л воды для варки;
  • 50 г соли;
  • 1 головка чеснока;
  • 2 соцветия укропа;
  • 5 листков хрена.

Приготовление:

  1. Предварительно замоченные и почищенные грибы поместить в кастрюлю, залить водой и варить, постоянно снимая пену с рассола;
  2. Когда они опустятся на дно кастрюли нужно откинуть их на дуршлаг;
  3. Поместить грибы в стерильную миску, добавить почищенный и нарезанный пластинами чеснок, засыпать солью и аккуратно перемешать;
  4. Простерилизовать банки, на дно выложить листки хрена и ветки укропа, поверх них грибы. Их нужно хорошенько примять ложкой;
  5. Сверху грибы нужно накрыть еще одним листиком хрена положите лист хрена и укроп, залить кипящим рассолом и закатать.

После остывания нужно поместить банки с грибами в холодильник. Кушать грибы можно будет уже через неделю после закатывания.

Сухой рецепт заготовки сыроежек на зиму

Также можно заготовку из грибов сыроежек на зиму делать по рецепту, который называется сухим.

Ингредиенты:

  • 1 кг не горьких сыроежек;
  • 60 г соли.

Приготовление:

  1. Грибы вымыть и подсушить;
  2. Нарезать крупными кусками и засыпать солью;
  3. Все тщательно перемешать и сложить простерилизованные банки;
  4. Емкости нужно накрыть чистой марлей, установить гнет и поставить в холодильник.

Спустя 3 недели грибы будут готовы к употреблению. Перед тем как кушать сыроежки приготовленные таким вот способом, нужно их вымочить в простой воде для удаления избытка соли.

Рецепт приготовления грибной икры из сыроежек на зиму

Очень вкусной получается икра из сыроежек на зиму, рецепт приготовления достаточно прост.

Ингредиенты:

  • 250 грамм сыроежек;
  • 200 грамм лука;
  • 1 морковь;
  • 70 мл растительного масла;
  • 15 мл уксуса;
  • свежая зелень по вкусу;
  • лавровый лист, соль и перец.

Пошаговая инструкция приготовления сыроежек на зиму по этому рецепту выглядит следующим образом:

  1. Подготовленные грибы нарезать кусочками, выложить в эмалированную посуду;
  2. Добавить воду, соль, варить 30 минут, при этом каждые 5 минут нужно снимать пену и перемешивать грибы;
  3. Как только рассол станет прозрачным, а грибы опустятся на дно, их нужно достать шумовкой и сразу перекрутить их на мясорубке;
  4. Морковь и лук вымыть, почистить, морковь натереть на терке, лук нарезать кубиками, пассеровать овощи на сильном огне и добавить в перекрученные грибы;
  5. Добавить в массу растительное масло, уксус, специи, тщательно перемешать и все вместе тушить на медленном огне 50-60 минут.

Спустя указанное время необходимо переложить грибную массу в ошпаренные сухие банки и закатать. После охлаждения грибную икру из сыроежек на зиму, приготовленную по рецепту, описанному выше, нужно отправить на хранение в прохладное и темное место.

Рецепт заморозки сыроежек на зиму

Если у вас нет времени или желания на засолку или приготовление икры, а сохранить урожай грибов нужно во что бы то ни стало, на помощь придет заморозка сыроежек на зиму, рецепт которой очень прост. Достаточно перебрать, почистить и вымыть грибы, хорошенько их просушить. Затем нужно сложить их в плотные полиэтиленовые пакеты для заморозки, стараясь оставлять в них как можно меньше воздуха, герметично закрыть их и отправить в морозилку.

Поделиться статьей:

grib-info.ru

Как приготовить сыроежки – лучшие идеи приготовления грибных блюд

Ознакомившись с изложенной ниже информацией, вы узнаете, как приготовить сыроежки. Любое блюдо или закуска, полученная путем исполнения одного из рецептов, порадует вас великолепным вкусом и сделает верным почитателем данного сорта грибов.

Как готовить сыроежки?

Сыроежки, рецепты приготовления которых могут быть самыми разнообразными, невзирая на название все же требуют термической обработки и не употребляются в сыром виде. Чтобы грибы получились вкусными и в полной мере сохранили все свои природные свойства, необходимо придерживаться определенных правил при переработке продукта.

  1. В зависимости от сорта, грибы просто перебирают и промывают или же замачивают их ненадолго в слегка подсоленной воде. Данный этап необходим при использовании сыроежек с горьковатым привкусом.
  2. Блюда из сыроежек не требуют длительной термической обработки: 20-30 минут варки, жарки или тушения хватит, чтобы добиться желаемого вкусового результата.
  3. По желанию можно заготовить сыроежки на зиму, воспользовавшись проверенными рецептами и правильными рекомендациями.
Как посолить сыроежки – простой способ

Сыроежки, рецепт без уксуса которых будет изложен далее, готовятся без термической обработки и вымачивания, поэтому для реализации технологии следует выбирать экземпляры с зеленовато-синими шляпками без горьковатого привкуса. Полученная закуска удивит отменными вкусовыми характеристиками и потрясающим грибным благоуханием, которое в данном случае особенно ярко выражено.

Ингредиенты:

  • сыроежки – 2 кг;
  • соль – 100 г;
  • семена укропа – 2 ст. ложки.

Приготовление

  1. Дно емкости для засола посыпают смесью из соли и укропных семян.
  2. Грибы очищают от загрязнений щеточкой, укладывают в посудину шляпками вниз, пересыпая слои солью с укропом.
  3. Прижимают грибную массу грузом и ставят на полку холодильника на 2 недели.
Как солить сыроежки горячим способом?

Далее о том, как приготовить соленые сыроежки путем засола горячим способом. Используемую в рецепте зелень и пряные добавки можно заменить любыми другими на выбор и вкус: зачастую состав дополняют разрезанными на несколько частей чесночными зубцами, лавровым листом, зеленью и семенами укропа, семенами горчицы.

Ингредиенты:

  • сыроежки – 2 кг;
  • вода – 3 л;
  • соль – 100 г;
  • листья смородины и вишни – по 10 шт.;
  • гвоздика в бутонах – 7-8 шт.;
  • горошины душистого перца – 10-15 шт.

Приготовление

  1. Подготовленные промытые сыроежки помещают в кастрюлю, заливают водой и после закипания добавляют соль, зелень, пряности.
  2. Отваривают грибы до опускания всех экземпляров на дно и посветления рассола.
  3. Расфасовывают сыроежки соленые по стерильным банкам, заливают кипящим рассолом, укупоривают, укутывают до остывания и хранят в холодильнике.
Как солить сыроежки холодным способом?

Засолка сыроежек холодным способом по следующему рецепту несколько более хлопотная, нежели предыдущие описанные вариации, однако результат стоит потраченных усилий и времени. И вкус, и аромат заготовки удивит даже придирчивых гурманов, порадовав насыщенностью и неимоверным ярким благоуханием.

Ингредиенты:

  • сыроежки – 2,5 кг;
  • вода – 0,5 л;
  • соль – 250 г;
  • зонтики укропа – 2 шт.;
  • чеснок – 5 зубков;
  • листья смородины – 3 шт.

Приготовление

  1. Вымачивают сыроежки 2 дня, ежедневно дважды (утром и вечером) меняя воду.
  2. Опускают экземпляры в подсоленную воду, смешав 2,5 л жидкости и 50 г соли, оставляют на 8 часов.
  3. На дно кастрюли укладывают листья смородины, а затем грибы, пересыпая их солью, укропом и нарезанным чесноком.
  4. Заливают грибную массу 0,5 л воды, прижимают грузом и оставляют в холодильнике на 2 недели.
Икра из сыроежек

Следующий рецепт о том, как приготовить сыроежки в виде икры. Подобная закуска прекрасно хранится продолжительное время в холодильнике и может быть заготовлена на зиму. По желанию можно дополнить состав лакомства чесноком, свежими помидорами или уменьшить количество используемого репчатого лука.

Ингредиенты:

  • сыроежки – 0,5 кг;
  • лук репчатый – 400 г;
  • морковь – 2 шт.;
  • масло растительное – 150 мл;
  • уксус 6 % – 30 мл;
  • зелень – 1 пучок;
  • лавр – 2 шт.;
  • соль, перец – по вкусу.

Приготовление

  1. Подготовленные грибы отваривают в подсоленной воде до опускания на дно, после чего извлекают из отвара шумовкой и перекручивают на мясорубке вместе с спассерованным луком и обжаренной морковью.
  2. Перекладывают массу в кастрюлю или сотейник, добавляют масло, уксус, соль, перец, зелень и лавр.
  3. Далее грибная икра из сыроежек протушивается 1,5 часа, расфасовывается по стерильным банкам и хранится в холоде.

Далее вы узнаете, как приготовить жареные сыроежки. При использовании сортов без явной горчинки их можно использовать без предварительного отваривания. Остальные грибочки нужно вымочить, а затем выдержать в кипящей подсоленной воде 20-30 минут. Время жарки продукта при этом значительно сокращается.

Ингредиенты:

  • сыроежки – 0,5 кг;
  • лук репчатый – 250 г;
  • чеснок – 3-5 зубков;
  • масло сливочное – 50 г;
  • сок лимонный – 1 ст. ложка;
  • соль, перец, зелень – по вкусу.

Приготовление

  1. На масле пассеруют нарезанный лук и чеснок.
  2. Добавляют нарезанные грибы, жарят на сильном огне, помешивая.
  3. Приправляют жареные сыроежки рубленой зеленью, прогревают еще 2 минуты и подают.
Суп из сыроежек – рецепт

Суп из сыроежек можно сварить как из свежих, так и из соленых экземпляров, предварительно промыв их и вымочив от излишков соли. В качестве наполнения в данном случае используется классический набор из лука, моркови и картофеля. С добавлением мелкой вермишели или с крупами горячее получится еще гуще и сытнее.

Ингредиенты:

  • сыроежки – 0,5 кг;
  • лук и морковь – по 2 шт.;
  • картофель – 5 шт.;
  • лавр – 3-4 шт.;
  • масло сливочное – 70 г;
  • вода – 2-2,5 л;
  • соль, перец, зелень – по вкусу.

Приготовление

  1. Отваривают в воде подготовленные грибы, добавляют картофельные кубики.
  2. Через 10 минут варки закладывают поджарку на масле из лука и моркови, лавр, перец, готовят яство еще 10 минут.
  3. При подаче приправляют горячее зеленью.
Сыроежки с картошкой – рецепт

Нижеследующие рекомендации помогут разобраться с тем, как приготовить сыроежки с картошкой. Беспроигрышное сочетание овоща с грибами давно используется для реализации множества разнообразных идей, благодаря которым можно получить вареные, тушеные или, как в данном случае, жареные кулинарные композиции.

Ингредиенты:

  • сыроежки – 0,5 кг;
  • картофель – 800 г;
  • масло растительное – 100 мл;
  • лук – 200 г;
  • чеснок – 1 зубец;
  • соль, перец, зелень – по вкусу.

Приготовление

  1. По отдельности обжаривают нарезанную картошку до румяности и подготовленные грибы до испарения влаги.
  2. Соединяют компоненты в общей посудине, добавляют лук, обжаривают, приправляют содержимое по вкусу, бросают чеснок, перемешивают.
  3. По готовности жареная картошка с сыроежками сдабривается зеленью и подается.
Вареники с сыроежками – рецепт

Вареники из сыроежек благодаря нежному вкусу и потрясающему аромату последних получаются особенно лакомыми и аппетитными. Начинку можно оформить, пожарив грибную массу с репчатым луком на сковороде или дополнив наполнение картофельным пюре, зеленью. Мягкости тесту придаст маргарин или сливочное масло.

Ингредиенты:

  • мука – 600 г;
  • вода – 1 стакан;
  • маргарин или масло – 50 г;
  • яйцо – 1 шт.;
  • сыроежки – 700-800 г;
  • лук репчатый – 200 г;
  • соль, перец, зелень – по вкусу;
  • масло для жарки – 70 г.

Приготовление

  1. Соединяют просеянную подсоленную муку с яйцом и маргарином, добавляют воду, замешивают тесто.
  2. Оставляют основу на 40 минут, прикрыв пленкой.
  3. На масле жарят сыроежки, добавив лук.
  4. Из теста и начинки оформляют вареники и отваривают изделия 7-10 минут в подсоленной воде.
Как заморозить сыроежки?

Когда удалось сполна насладиться свежим вкусом грибов и засолить их впрок, самое время сыроежки заморозить на зиму. В таком виде изделия можно использовать в течение года для приготовления любимых блюд и закусок, наслаждаясь великолепным их вкусом и ни с чем не сравнимым грибным ароматом.

  1. Прежде чем замораживать сыроежки их необходимо правильно подготовить: перебрать, избавить от мусора и промыть.
  2. Кроме того большая часть имеющихся сортов требует предварительного вымачивания и отваривания.
  3. После того, как в процессе варки грибочки опустились на дно, их сливают на дуршлаг и оставляют для стекания.
  4. По возможности обсушивают грибную массу бумажными полотенцами, расфасовывают по герметичным порционным пакетам или контейнерам, выдавливают по максимуму воздух.
  5. Отправляют заготовку для хранения в морозильную камеру.
  6. При желании замораживать можно и обжаренные сыроежки.
Статьи по теме:
Кабачки с мясом – оригинальные рецепты вкусных блюд на каждый день

Кабачки с мясом – прекрасно сочетаемые компоненты для реализации сотен рецептов. Высокие пищевые свойства и отличная переносимость любой термообработки, позволяют жарить, запекать и тушить их. Итогом являются полезные блюда для будней и праздников.

Невероятно вкусный и полезный омлет с цветной капустой можно приготовить разными способами, применяя подручную домашнюю технику: духовку, мультиварку или пароварку. Дополняют угощение другими овощами, зеленью или мясными ингредиентами.

Гуляш из куриного филе – хороший способ накормить семейство новым и оригинальным угощением. Простая поджарка из доступных ингредиентов преобразит наскучившее блюдо, прекрасно дополнит даже самый незамысловатый гарнир и насытит очень голодных едоков.

Вкусные лодочки из баклажанов готовятся быстро и просто, важно определится с выбором подходящего наполнения. В качестве начинки применяют мясо разного сорта, овощные смеси, сыр или грибы. Это сытное самодостаточное угощение, не требующее гарнира.

womanadvice.ru

Маринование сыроежек на зиму в банках: фото, рецепты, как мариновать грибы и видео-инструкция

Энциклопедия «Гриб-Инфо»ПереработкаМаринование грибовСыроежки, маринованные на зиму в банках: рецепты приготовления

Такие грибы как сыроежки встречаются в лесу гораздо чаще остальных представителей этого семейства. По своим вкусовым качествам они ничуть не уступают любимым многими гурманами лисичкам, подосиновикам и боровикам. Для тех, кто любит «тихую охоту», сыроежки – это хорошая добыча, из которой впоследствии хозяйки могут приготовить очень разнообразные полезные и питательные лакомства, как для повседневного употребления, так и для зимнего хранения. Сыроежки можно отваривать в подсоленной воде, жарить с луком и овощами, запекать и сушить, но самым любимым способом их приготовления является маринование. Маринованные сыроежки на зиму – это вкуснейшее блюдо, которое можно приготовить по рецептам, приведенным ниже.

Подготовка к маринованию сыроежек на зиму

Вас интересует вопрос, как мариновать сыроежки на зиму, какие рецепты лучше использовать? Сегодня придумано и опробовано большое количество способов приготовления этих даров природы, однако прежде чем приступать непосредственно к готовке, необходимо правильно обработать основной продукт. Выполняется эта подготовка следующим образом:

  1. Грибы необходимо перебрать, отложить те, что имеют червоточины и прочие повреждения;
  2. Удалить из грибов весь мусор (листья, палочки и пр.) выложить сырье в дуршлаг и тщательно промыть проточной водой;
  3. Удалить пленку с поверхности шляпки. Удобнее всего это делать с помощью ножа;
  4. Переложить сыроежки в кастрюлю и залить их горячей водой;
  5. Довести содержимое кастрюли до кипения, варить в течение 7-10 минут (в зависимости от их размера) и снять с огня.

После того как все подготовительные процедуры завершены, можно приступать к выбору рецепта маринованных сыроежек на зиму, самые популярные из которых приведены ниже.

Классическое приготовление маринованных грибов сыроежек на зиму

Можно приготовить маринованные грибы сыроежки на зиму классическим способом. Он используется большинством хозяек и гарантирует получение вкусной заготовки, которая хорошо хранится в течение всей зимы.

Ингредиенты:

  • 5 кг сыроежек;
  • 20 горошин черного перца;
  • 750 мл уксуса 9%;
  • 3 ст. л. поваренной соли;
  • 10 листков лавра;
  • гвоздика по вкусу;
  • 25 г сахара;
  • 2 л воды.

Приготовление:

  1. Довести до кипения воду в глубокой кастрюле, добавить соль, сахар и специи, проварить 5 минут;
  2. Соединить смесь с уксусом и погрузить в нее подготовленные описанным выше способом грибы, довести до кипения и варить 10 минут;
  3. Тем временем нужно подготовить банки — вымыть и ополоснуть кипятком;
  4. Разложить грибы по подготовленным банкам, залить оставшимся маринадом и закупорить.

Хранить заготовку необходимо в прохладном месте, например, в погребе или подвале.

Рецепт маринованных сыроежек на зиму с хреном

Тем, кто любит блюда с необычным и ярким вкусом, наверняка понравится рецепт приготовления маринованных сыроежек на зиму с хреном.

Ингредиенты:

  • 1 кг грибов;
  • 5 зонтиков укропа;
  • 5 шт. перца горошком;
  • 1 ч. л. сахара;
  • 2 дольки чеснока;
  • 30 г соли;
  • 10 листов смородины;
  • корень хрена;
  • 1,5 л воды;
  • 1 ст. л. уксуса.

Не знаете, как мариновать сыроежки на зиму в банках и сомневаетесь, что у вас получится? На самом деле процесс приготовления осень прост, выглядит он следующим образом:

  1. Простерилизовать банки и накрыть их крышками;
  2. Мелко нарезать чеснок, листья смородины и укроп, корень хрена нарезать ломтиками;
  3. Выложить приправы и зелень на дно банок;
  4. Подготовленные (уже приваренные) грибы нарезать кусочками, переложить в банки поверх зелени и приправ;
  5. Довести воду до кипения, затем растворить в ней сахар и соль, хорошо перемешать;
  6. Теперь можно добавить уксус, тщательно перемешать смесь и разлить по банкам с подготовленными грибочками.

Закатать банки, а после того как они остынут, следует их переместить в прохладное место для хранения.

Вкусные маринованные сыроежки на зиму: рецепт с фото

Очень вкусными с необычным вкусом получаются маринование сыроежки на зиму в банках, приготовленные по рецепту приведенному ниже. Лук, входящий в перечень основных ингредиентов, придает блюду пикантный вкус.

На просторах интернета можно найти разнообразные рецепты приготовления маринованных сыроежек на зиму с подробными фото, которые наглядно демонстрируют весь процесс и помогают все сделать правильно.

Ингредиенты:

  • 1 кг грибов;
  • 250-300 мл уксуса 9%;
  • 5 листочков лавра;
  • 5 горошинок черного перца;
  • 5 гвоздик;
  • 300 г лука;
  • 2 ч. л. сахара;
  • 500 мл воды;
  • 2 ст. л. соли.

Приготовление:

Подготовленные грибы разложить в пастеризованные банки

Воду в кастрюле довести до кипения, добавить все приправы, соль, сахар, уксус

Лук почистить и целиком отправить в маринад, варить 7 минут

Луковицы вынуть из маринада, разрезать на 4 части и разложить в банки

Разлить маринад по банкам, закатать и оставит остывать.

Хранить такие заготовки на зиму желательно в холодильнике.

Как мариновать сыроежки на зиму: рецепт с видео

Процесс приготовления сыроежек практически не отличается, изменяется лишь состав и пропорции ингредиентов. Зная как мариновать грибы сыроежки на зиму, можно экспериментировать и использовать самые разнообразные варианты. Например, можно использовать следующий набор ингредиентов:

  • 1,5 кг грибов;
  • 800 мл воды;
  • 350 мл уксуса 9%;
  • 2 ч. л. сушеного имбиря;
  • гвоздика, черный и душистый перец горошком по вкусу;
  • 1 ч. л. тмина;
  • 5 кислых зеленых яблок;
  • 5 ч. л. сахара;
  • 2 ст. л. соли.

Приготовление:

  1. Воду довести до кипения и добавить в нее соль, сахар и специи, проварить 5 минут, добавить вымытые, нарезанные на дольки яблоки;
  2. Соединить смесь с уксусом и погрузить в нее подготовленные описанным выше способом грибы, довести до кипения и варить еще 7-10 минут;
  3. Разложить грибы в подготовленные банки, залить оставшимся маринадом и закупорить.

Приготовленные по этому рецепту грибочки получаются очень ароматными и по-восточному пряными.

Лучше разобраться в том, как нужно мариновать сыроежки на зиму, поможет видео-инструкция, приведенная ниже:

Тем, кто любит острые блюда, наверняка интересно как готовить маринованные грибы сыроежки на зиму с такими компонентами как горчица. Технология приготовления таких грибов мало чем отличается от описанной в рецептах выше. Горчица добавляется прямо в маринад одновременно с уксусом.

Можно использовать следующий набор ингредиентов:

  • 1 кг сыроежек;
  • 1,5 л кипяченой воды;
  • 50 мл уксуса;
  • 3 ст. л. готовой горчицы;
  • перец горошком по вкусу;
  • 25 г соли;
  • 1 ст. л. зелени;
  • 1 ст. л. сахара.

Используя приведенные выше рецепты, каждая хозяйка сможет сделать свои заготовки на зиму более разнообразными. Самое главное со всей ответственностью подойти к подготовке основного сырья, иначе банки могут «взорваться» если внутри них окажутся испорченные грибочки.

Поделиться статьей:

grib-info.ru



Как приготовить сыроежки? Рецепты соленых, жареных и отварных сыроежек. Как приготовить грибы сыроежки

Сбор и подготовка сырья

Опытные любители тихой охоты знают, что собирать сыроежки следует в отдельную емкость или мешочек. Пластинчатые шляпки, тонкие ножки быстро ломаются, загрязняя весь урожай. По причине хрупкости грибы следует промывать осторожно, без необходимости не снимать поверхностную пленку – она обеспечивает целостность плодовых тел.

Нужно сыроежки, их в сковороде, чтобы грибы приятно похрустывали, радовали сочностью и насыщенным вкусом?

Сыроежки жареные

Очищенные и отмытые грибы отваривать не нужно – они не требуют длительной термической обработки, к тому же после варки жареха будет не такая вкусная. Если вы боитесь горечи, отделите красные шляпки от других и предварительно отварите их в течение 20 минут в подсоленной воде, затем уже жарьте с остальными сыроежками.

Как вариант, красные шляпки можно подержать 4-5 часов в подсоленной воде (25 г на 2 л), промыть в дуршлаге и потом уже жарить.

Для придания блюду большей сочности на полкило грибов возьмите пару крупных луковиц, нарубите полукольцами и пассеруйте с двумя столовыми ложками сливочного масла.

Нарежьте сыроежки небольшими кусками, смешайте с луком и столовой ложкой свежевыжатого сока лимона. Положите по вкусу соль и жарьте грибы 15 минут без крышки на среднем огне.

Тушеные сыроежки с зеленью

Вы можете приготовить грибы сыроежки с зеленью – это сытное блюдо само по себе и отличная добавка к картофелю. 600 г очищенного сырья доведите до кипения в подсоленной воде, промойте прохладной водой в дуршлаге и тушите с двумя столовыми ложками подсолнечного масла до выкипания сока. Смешайте с рубленой свежей зеленью укропа и подавайте на стол.

Если хотите и зимой попробовать тушеные сыроежки, приготовление домашней заготовки будет отличаться лишь в малом. Зелень не кладите; поместите свежеприготовленные грибы горячими в стерилизованную тару и залейте подсолнечным маслом так, чтобы оно образовало двухсантиметровый слой над сыроежками. Закатайте банки и храните в холоде полгода.

Как солить сыроежки на скорую руку

Любители соленых грибов могут полакомиться сочной закуской уже спустя месяц после приготовления. Для этого килограмм сыроежек необходимо почистить и осторожно помыть, дать стечь воде. Положите грибы в эмалированную емкость, пересыпая солью грубого помола (всего достаточно четырех столовых ложек).

Добавьте 4 очищенных и нарезанных чесночных зубчика, прикройте ветками вишни, смородины или черники. Держите в темноте и прохладе 12 часов. Потом смешайте сыроежки с рубленой луковицей и тремя столовыми ложками растительного масла, переложите в стерилизованные банки. Плотно закройте полиэтиленовыми крышками на месяц.

Маринованные сыроежки

Хрупкие пластинчатые грибы чрезвычайно вкусны в маринадах, только сырье для такой заготовки необходимо тщательно обработать. Снимите пленку со всех шляпок и варите сыроежки 20 минут варить в подсоленной воде, потом откиньте на дуршлаг.

Для маринования пары килограммов грибов достаточно литра холодной воды. В нее положите 10 г сахарного песка и 40 г соли крупного помола, половину очищенной луковицы, 3-4 лавровых листа, десяток душистых горошин перца и 5-6 гвоздичных бутонов. Доведите маринад до кипения и держите на огне 5 минут.

Влейте 0,4 л 9%-ного уксуса, после чего положите в посуду с маринадом отварные сыроежки и держите на огне еще 5 минут. Поместите в кипящую смесь несколько луковиц, нарезанных кольцами.

Грибы достаньте шумовкой, положите в стерилизованную тару, а маринад кипятите дополнительно 15 минут и разлейте по банкам. Закатайте емкости, держите в темноте и прохладе до начала зимнего сезона.

Теперь вы знаете, как приготовить грибы сыроежки и можете экспериментировать и придумывать собственные фирменные блюда. Из этих даров леса получаются великолепные начинки для пирогов, грибные супы и соусы. Приятного аппетита!

Практически в любом лесу можно насобирать целую корзину сыроежек. Но не все грибники жалуют этот распространенный гриб, поскольку он довольно хрупкий, в связи с чем его сбор и транспортировка должны осуществляться с особой осторожностью. Зато кулинары очень ценят сыроежки за их нежную мякоть и приятный аромат, поэтому с удовольствием их готовят. Из них можно сделать самые разнообразные блюда: салаты, супы, закуски. Их подают как отдельно, так и с гарниром. Сыроежки маринуют, солят, жарят и тушат. Как правильно приготовить эти грибы, чтобы блюдо оказалось выше всякой похвалы?

Предварительная обработка

Существует уйма вариантов приготовления сыроежек для повседневного меню. Не меньше возможностей и для зимних заготовок. Но никто не будет отрицать, что перед приготовлением эти ломкие грибочки следует тщательно обработать, а именно:

  • только что принесенные из леса или купленные на базаре грибы заливают водой на два часа;
  • после этого перебирают их, избавляясь от испорченных и пораженных червями экземпляров;
  • снимают со шляпок тонкую пленку, снова промывают и раскладывают на решетке, чтобы вода смогла стечь.

Жареные сыроежки

Задавшись вопросом о том, что можно приготовить из сыроежек, многим, наверное, сразу же придет в голову мысль, что их следует пожарить. Казалось бы, что может быть проще? Но и тут есть свои подводные камни, например, нужно знать, сколько варить сыроежки перед жаркой и т. п.

Как жарить сыроежки? Если вы имеете дело с сортом грибов, для которого не характерна явная горчинка, предварительное отваривание не требуется. Во всех остальных случаях грибочки вымачивают, а после выдерживают в кипящей воде в течение 15 минут. Нужно отметить, что это значительно сокращает время жарки продукта.

Классический рецепт

Потребуются следующие ингредиенты:

Технология приготовления:

  1. Проводится пассеровка нарезанного лука и чеснока.
  2. К овощам добавляются нарезанные сыроежки.
  3. Включают сильный огонь или максимальную мощность электроплиты, всё это обжаривают, периодически помешивая лопаткой.
  4. В конце добавляют специи и свежую зелень, еще 3−4 минуты оставляют на слабом огне, после чего подают к столу.

Грибы, жаренные в сметане

Добавление сметаны придает жареным грибочкам особую изысканность и дополнительный аромат.

Ингредиенты:

  • грибы – 0,5 кг;
  • сметана – 5 столовых ложек;
  • репчатый лук – две луковицы;
  • подсолнечное масло;
  • соль и специи, зелень – по вкусу.

Приготовление:

  1. После того как лук будет очищен, его мелко шинкуют и пассеруют в разогретом растительном масле до появления золотистой корочки, затем снимают с плиты.
  2. Грибы очищают от грязи и прилипшей травы, промывают под краном и ставят варить приблизительно на 10 минут. Выкладывают в дуршлаг, дают жидкости стечь.
  3. Сыроежки нарезаются кубиками, но можно и соломкой (все зависит от ваших предпочтений). Грибы обжаривают отдельно от лука. В самом конце, когда уже будут обжарены все компоненты, вливают сметану, солят. В таком состоянии блюдо должно прокипеть минимум две минуты.

Рецепт сыроежек с картошкой

Необходимые продукты:

  • грибы – 500 г;
  • картофель – 6 штук;
  • две луковицы;
  • растительное масло;
  • соль;
  • специи;
  • свежая зелень.

Пошаговое руководство приготовления:

Запеченные грибочки

Ингредиенты:

  • грибы – 300 г;
  • один помидор;
  • репчатый лук – одна штука;
  • чеснок – два зубчика;
  • одна морковка;
  • сыр мягких сортов – 150 г;
  • ветчина – 100 г;
  • рис – один стакан;
  • хрустящие крекеры с солью – пять штук;
  • майонез – две столовые ложки;
  • подсолнечное масло;
  • зелень;
  • соль;
  • специи.

Способ приготовления:

Запеченные сыроежки – вкусный и сытный деликатес, который чаще всего подают как отдельное блюдо.

Приготовление в кляре

Ингредиенты:

Пошаговый порядок приготовления:

Сыроежки, приготовленные в кляре, отличаются более насыщенным вкусом, к тому же хрустящая корочка делает блюдо особенно пикантным. Оно прекрасно сочетается с различными соусами.

Суп из сыроежек

Наваристый супчик из этих грибочков не оставит равнодушным даже самого привередливого гурмана. Да и тем, кто устал от привычного меню, такое блюдо наверняка придется по душе.

Состав:

  • грибы – 500 г;
  • картофель – 5 штук;
  • вода – 2,5 л;
  • репчатый лук – 2 штуки;
  • красный перец – 2 штуки;
  • морковь – одна штука;
  • чеснок – 2 зубчика;
  • сметана – 3 столовые ложки;
  • лавровый лист – 2 штуки;
  • зелень, соль, специи – на свое усмотрение.

Приготовление:

Кто не хочет себя утруждать стоянием перед плитой, может попробовать приготовить такой суп в мультиварке.

Соление холодным способом

Как засолить сыроежки холодным способом в домашних условиях? Любителям солений стоит заострить свое внимание именно на этом рецепте, ведь благодаря ему можно приготовить великолепную закуску для праздничного стола.

Потребуются:

Берут чистую сковородку, на которой обжаривают натертую морковку и нашинкованный болгарский перец. Всё жарят 3−5 минут.

  • грибочки – 1 кг;
  • вода – 0,25 мл;
  • соль – 100 г;
  • два пучка укропа;
  • три зубчика чеснока;
  • два листа черной смородины.

Готовится лакомство следующим образом:

  1. Для начала нужно вымочить грибы (достаточно двух дней). При этом не забывают менять воду два раза в сутки.
  2. Грибочки помещают в емкость с подсоленной водой ориентировочно на 6 часов.
  3. На дно кастрюли укладываются смородиновые листья, а затем сыроежки, присыпанные солью, нарезанным чесноком и специями.
  4. Грибная масса заливается стаканом воды и прижимается каким-нибудь тяжелым предметом. Через две недели соленья будут готовы к употреблению.

Маринованные сыроежки

Пожалуй, не будет преувеличением сказать, что это одна из самых вкусных и одновременно легких в приготовлении заготовок на зиму.

Итак, для приготовления продукта потребуются:


Последовательность действий при мариновании сыроежек:

  1. В первую очередь нужно очистить и промыть главный ингредиент, а затем уже залить водой таким образом, чтобы она покрывала грибы не более чем на 2 см.
  2. Кастрюлю с грибочками ставят на медленный огонь. Варят их в течение 10 минут, постоянно снимая пену.
  3. Теперь необходимо приготовить сам маринад. Для этого смешивают соль, сахар и имеющиеся специи.
  4. Проварив смесь около пяти минут, добавляют к ней яблочный уксус.
  5. При помощи шумовки грибы извлекают из воды и моментально помещают в приготовленный маринад.
  6. Далее, проварив 10−15 минут, грибочки сортируют по банкам, перед этим не забыв простерилизовать посуду и крышки.
  7. Закатав, банки укутывают в шубу или шерстяной свитер, ждут их остывания.
  8. Заготовки хранят в прохладном месте – в погребе или на полке холодильника.

Грибная икра

Используя следующий рецепт, можно приготовить вкуснейшую икру из грибов этого сорта. Такую закуску можно без опасений хранить долгое время в холодильнике и заготавливать ее на зиму. Для улучшения вкусовых качеств в лакомство можно добавить чеснок и свежие помидоры.

Ингредиенты:

  • основной продукт – 500 г;
  • две луковицы;
  • две небольшие морковки;
  • подсолнечное масло – 100 мл;
  • 5% яблочный уксус – 20 мл;
  • лавровый лист – 1 штука;
  • свежая зелень, перец, соль – по вкусу.

Приготовление:

Заморозка даров леса

Часто случается так (особенно в урожайные годы), что грибы буквально некуда девать. Все блюда с ними перепробованы, и все банки закручены. Тогда самое время вспомнить про заморозку. В замороженном виде продукт можно хранить больше года, при этом используя его для приготовления любимых блюд.

Сыроежки являются вкусными, полезными и питательными грибами, которые начинающие грибники ошибочно путают с поганками. Эти распространенные грибы, как никакие другие, подходят для приготовления всевозможных блюд. Любая хозяйка, освоившая процесс приготовления сыроежек, подтвердит, что подобные грибы могут стать украшением стола, да и в желудке они перевариваются быстрее, нежели другие виды съедобных грибов.

Грибы, тушеные со сметаной – это классика. Попробуйте приготовить по этому рецепту сыроежки.

Как готовить:

  1. Грибы почистите и нарежьте крупными кусками, зелень и чеснок порубите, лук нарежьте полукольцами.
  2. На раскаленном растительном масле поджарьте лук. Добавьте грибы и жарьте 10 мин. на среднем огне.
  3. Добавьте в сковороду перец, соль, лавровый лист и сметану. Тушите еще 10 мин.
  4. Когда все будет почти готово, положите в блюдо чеснок и зелень, снимите его с огня.

Такая грибная подлива подойдет к кашам, картошке, макаронам.

Рецепт запеченных сыроежек с ветчиной и сыром

По этому рецепту у вас получится полноценное блюдо для сытного обеда. Вам потребуется:

  • 50 г сыроежек;
  • 1 помидор;
  • 1 луковица;
  • 1 морковка;
  • 5 зубчиков чеснока;
  • 200 г сыра;
  • 150 г ветчины;
  • 1 ст. риса;
  • 7 соленых крекеров;
  • 3 ст. л. майонеза;
  • растительное масло;
  • соль и специи.

Технология приготовления:

  1. Грибы очистите, отрежьте ножки, шляпки натрите солью и специями.
  2. Рис отварите до готовности и посолите.
  3. Подготовьте овощи: лук и грибные ножки мелко нарежьте, чеснок порубите, морковь натрите на терку, помидоры порежьте кубиками.
  4. Разберитесь с остальными ингредиентами: натрите сыр, порежьте на маленькие кубики ветчину, крекеры раскрошите.
  5. Поджарьте лук с чесноком, ветчиной и морковью. Также можете добавить в сковороду во время жарки измельченные ножки грибов. Это необязательно, но они тоже довольно вкусные.
  6. К овощной зажарке добавьте готовый рис, помидоры, крекеры, треть сыра и посолите. Тщательно перемешайте начинку до однородности. По желанию можете добавить любые специи.
  7. Разложите получившуюся массу по шляпкам. Сверху смажьте их майонезом и притрусите сыром. Можете также немного сбрызнуть подготовленные к запеканию шляпки любым растительным маслом.
  8. Противень смажьте растительным маслом, уложите на него заготовки и отправьте их в горячую духовку на 30 мин. Температура запекания около 190°С.

Блюдо лучше подавать горячим.

Попробуйте подать сыроежки по любому из описанных рецептов к праздничному столу, чтобы по-настоящему удивить гостей. В отличие от банальных вешенок или шампиньонов, этот гриб мало кто пробовал.

Большинство видов сыроежек пригодно для употребления в пищу. Некоторые разновидности имеют достаточно горький привкус, от которого можно избавиться при варке или вымачивании. После этого их можно обжаривать. Нельзя выделить какой-то определенный рецепт жареных сыроежек, так как каждый подбирает для себя лучший способ приготовления. Мы рассмотрим рецепты приготовления вкусных и одновременно простых в приготовлении блюд с жареными сыроежками.

При неправильном приготовлении этих грибов можно испортить весь вкус блюда, поэтому стоит следовать определенным правилам. Эти грибы совершенно не подходят для сушки и первых блюд. Поэтому жарка для них – оптимальный вариант.

Если вы впервые решили приготовить жареные сыроежки, то обязательно убедитесь, что в ваших руках не ядовитый вид гриба. Ядовитые можно определить по мякоти жгуче-едкого цвета. Обратите внимание: зеленая сыроежка и бледная поганка очень похожи друг на друга!

Даже если вы собрали съедобные сыроежки, их необходимо предварительно отварить перед тем, как пожарить. Без этой манипуляции вы рискуете не только вкусом блюда, но и здоровьем. Все грибы, а тем более сыроежки, требуют тщательной обработки и подготовки.

Сколько нужно варить

Как варить сыроежки перед жаркой, знают не все. Многие их разваривают как картофель, и тогда о цельной консистенции можно сразу забыть. Другие задаются вопросом: «А надо ли их вообще варить?» Ответы на этот вопрос разнятся, но чтобы избавиться от горечи и въевшейся в грибы пыли, достаточно их заварить так же, как блюда быстрого приготовления:

  1. залить крутым кипятком;
  2. подождать не более 7 минут;
  3. остудить.

Вернемся к вопросу о том, сколько варить сыроежки перед жаркой. Если передержать грибы в кипятке, то кроме неэстетичного вида разваливающихся волокон, вы получите блюдо, которое потеряет все свои полезные свойства и осядет мертвым грузом в организме.

Но есть и другой способ, не теряя полезных свойств, вымочить горечь из грибов:

  • Если у вас в руках красная сыроежка, сразу отделите кожицу от шляпки, так как у этого вида основную горечь дает именно она в качестве защитной реакции.
  • Положите сыроежки в соленую воду примерно на час, после чего промойте и приступайте к следующему этапу приготовления.

Что надо знать перед приготовлением

Сыроежки лучше не смешивать с другими грибами, так как они слишком нежны и при готовке вместе с более жесткими консистенциями могут попросту развалиться.

Существует мнение, что эти грибы можно есть без какой-либо обработки, но это не совсем верно. В сыроежках содержится горечь, которая, конечно, не убьет человека, но может вызвать довольно неприятные ощущения и расстройство желудка. Но если вы не можете удержаться не попробовать их сырыми, в небольших дозах они безвредны для человека.

С пылу с жару

Можно ли жарить сыроежки? Даже несмотря на то, что некоторые разновидности этого гриба являются условно съедобными, жарить их, однозначно, можно. Можно брать любой рецепт приготовления жареных грибочков – все они очень просты.

О сыроежках можно сказать, что любая их готовка иными от жарки способами, не принесет достаточного удовольствия, если, конечно, это не засолка. Самый вкусный способ жарить сыроежки с картошкой.

Скоро будет вкусно

Рассмотрим, в жареном виде. Существует множество рецептов их приготовления на сковородке, и разнятся они в основном компонентами.

Рецепт первый

Что понадобится:

Приготовление:

  • Нагрейте сковороду на сильном огне и положите сливочное масло. Если есть индикатор нагрева, дождитесь покраснения сердцевины посуды.
  • Выкладывайте репчатый лук вместе с бульонным кубиком. Когда лук обжарится, выложите его, но далеко не убирайте.
  • После этого приступайте к жарке сыроежек. На это потребуется всего 3-5 минут на большом огне.
  • За минуту до готовности грибов огонь убавьте на минимум, добавьте лук, а затем и сметану.
  • Тщательно размешайте, чтобы ничего не пригорело.

Готовое блюдо посыпьте зеленью и можно подавать на стол в качестве закуски.

Рецепт второй

Что потребуется:

Приготовление:

  • Очистите лук и чеснок, а затем мелко нашинкуйте. Поджарьте их до мягкости на сковородке на среднем огне.
  • Подготовленные грибы разрежьте на полоски и положите к предыдущим ингредиентам.
  • После этого добавьте лимонный сок и специи. Тщательно перемешайте и готовьте 3-5 минут на сильном огне.

Готовые грибы посыпьте зеленью и подавайте к жареному мясу или в качестве подливки в пасте.

Рецепт третий: грибочки с картофелем

Что потребуется:

Приготовление:

  • Помойте и очистите от шкурки картофель, а затем нарежьте его некрупной соломкой.
  • Разогрейте сковороду с маслом и выложите картошку. Обжаривать следует до первых признаков красивой золотистой корочки.
  • Пока происходит процесс жарки, крупно нарежьте грибочки.
  • Удалите шелуху с лука и чеснока, затем мелко нашинкуйте.
  • После этих манипуляций добавьте все оставшиеся ингредиенты на сковородку.
  • Тщательно перемешайте, чтобы все смогло прожариться.

После приготовления посыпьте зеленью и угощайте гостей и домочадцев.

При готовке любым рецептом не стоит пережаривать сыроежки, так как вряд ли кому-то захочется есть угольки. Не забывайте, что при жарке из грибов выпаривается много воды, и они уменьшаются в объеме. Поэтому рассчитывать количество приправ и соли следует уже к концу приготовления. Не бойтесь экспериментировать с добавками, ведь грибы в жареном виде сочетаются почти с любыми вкусами. Сыроежки жареные с картошкой в лучшем виде проявляют вкусовые качества таких грибов. Как в любом рецепте, добавление сметаны только подчеркнет нежность вкуса.

Сыроежка – это замечательный гриб, относящийся к роду пластинчатых и семейству Сыроежковых. Известно более 270 видов сыроежек, большинство из которых съедобны.

Они имеют широчайший ареал распространения и встречаются практически на всей территории России. Массовая “охота” за ними начинается в августе и сентябре. Встретить их можно и в лиственном, и в сосновом лесу, на опушках, на полянках и на обочине. Отличить этот ценный и вкусный гриб можно по следующим характеристикам. Шляпка у него полушаровидная, с возрастом, становящаяся более плоской, слегка сдавленная в центральной части. Обычно она достигает в диаметре 9-10 см. Мякоть сыроежки крепкая, несколько суховатая, по окрасу – белая, имеет приятный аромат. Ножка – ровная и плотная. Цвет шляпки может быть различным – и розовым, и бордовым, и серо-зеленоватым, и желтоватым. В этой статье мы расскажем, как готовится сыроежка. Приготовление этого гриба не предоставляет особых сложностей, а главное, каждый кулинар легко может подобрать рецепт себе по душе. Ведь существует масса вариантов – и тушение, и маринование, и соление, и запекание.

Вкусные сыроежки: способы приготовления и обработки

Этот гриб отличается высокой ломкостью мякоти, поэтому собирать и транспортировать его нужно максимально осторожно, чтобы не повредить и не сломать. Перед очисткой советуем поместить грибы в таз с водой и оставить отмокать минут на 20. Так вы легко и быстро очистить их от песка и грязи. После этого необходимо почистить сыроежки острым ножом, срезать все плохие и червивые места, снять шкурку со шляпки и ножки. После обработки и промывки рекомендуется проваривать грибы в течение 40 минут, для того чтобы убрать горечь. После обработки возможно приготовление сыроежек разными способами. Расскажем о самых популярных. Сыроежки могут стать восхитительным самостоятельным блюдом – холодной закуской, которая отлично подходит к праздничному столу.

Сыроежка. Приготовление превосходных соленых грибочков

Итак, для приготовления вкусной холодной закуски вам потребуются следующие ингредиенты:

  • грибы – 1 кг;
  • 4 ст.л. соли на 2 л воды;
  • 10 зубчиков чеснока;
  • пряные травы – укроп, эстрагон, мята.

Предлагаем вашему вниманию холодный способ засолки. После тщательной чистки и промывки порежьте сыроежки на пластины и уложите их в емкость для засаливания. Туда же добавьте чеснок, травы, соль и воду. Оставьте грибы просаливаться на 12 часов. Все, сыроежки уже можно отведать. Подавайте блюдо к столу, приправленное растительным маслом. По желанию к грибочкам можно добавить порезанный тонкими полукольцами репчатый лук. Приятного аппетита!

Сыроежка: приготовление тушеных грибочков

Одним из способов приготовления сыроежек является тушение. Промойте, хорошо очистите и нарежьте грибы. Приготовьте глубокую сковороду, поставьте ее на огонь. Поместите в нее грибы, добавьте немного воды, перец горошком, лавровый лист, гвоздику, листья карри. Посолите и готовьте на несильном огне, периодически помешивая блюдо. При желании можно добавить к грибам несколько столовых ложек сметаны. Если вы задумали потушить (пожарить) картошку с грибами, то советуем приготовить все ингредиенты по отдельности, а перед подачей к столу соединить их. Перед жаркой сыроежки не нужно отваривать, следует их почистить, помыть, порезать и поместить в сковороду с разогретым растительным маслом. К грибам можно добавить репчатый лук, соль и приправы. Картофель следует обжарить отдельно, а затем в глубоком сотейнике соединить ингредиенты.

Перед любителем грибов стоит непростой выбор, ведь в любом виде сыроежка, приготовление которой не является слишком сложной задачей, отличается особым нежным “ореховым” вкусом и приятным ароматом. Успешных вам кулинарных опытов!

Рекомендуем также

Рецепты сыроежек на зиму в банках: домашние заготовки

Главная » Консервирование грибов » Рецепты маринования сыроежек в домашних условиях

Сыроежки, или «пуговки» — один из часто встречающихся видов грибов в лесах России. Существует несколько разновидностей сыроежек, из которых получаются прекрасные бульоны, салаты, запеканки, гарниры, а также их можно солить и мариновать. Маринованные грибочки являются отличной закуской к праздничному столу, вкусным ингредиентом для приготовления сложных блюд, а мариновать их легко и интересно. Поэтому каждая хозяйка старается замариновать грибы своими руками, а не покупать магазинные — так и надежнее, и вкуснее, и можно сказать роднее.

Разновидности сыроежек


Опытный грибник всегда отличит съедобную сыроежку от несъедобной. Но все же рассмотрим подробнее те сорта, которые можно употреблять в пищу:

  • Пищевая. Внешние признаки — светло-коричневая шляпка, иногда с розоватым оттенком. Шляпка у гриба не вырастает больше 9 см. При повышенной влажности становится липкой. Имеет ореховый привкус.
  • Зеленая. Диаметр шляпки этого вида до 15 см, а цвет соответствует названию — серо-зеленая или светло-зеленая.
  • Цельная. Цвет — темно-коричневый, шляпка почти плоская.
  • Сине-зеленая. Кроме соответствующего цвета имеет гибкие пластинки.
  • Болотная. Темно-красная шляпка у молодых грибочков похожа на колокольчики, а у взрослых она более раскрыта.
  • Выцветающая. Преимущественно встречается в хвойной местности, имеют оттенки от оранжевого до красного.
  • Светло-желтая. Шляпка округлая, как шар.

Маринованные грибы можно кушать самостоятельно, а можно использовать для приготовления вкусных ароматных блюд. Главное — правильно замариновать, чтобы вкус и аромат сохранился на месяцы, и ваши труды в прямом смысле слова не покрылись плесенью.

Некоторые виды съедобных сыроежек

Коротко рассмотрим основные признаки самых распространенных разновидностей съедобных сыроежек:

НаименованиеХарактерные признаки
Болотная сыроежкаШляпка красная или с буроватым оттенком, слабо липкая. Пластинки у молодых грибов белые, затем кремовато-желтые. Ножка белая
Буреющая сыроежкаЦвет шляпки от пурпурно-красного до коричневого, с полосато-бугорчатым краем. Пластинки светло-кремовые, позже буроватые. Ножка белая или с розовато-фиолетовыми пятнами, буреющая. Запах напоминает селедочный
Зеленоватая сыроежкаМясистая серо-зеленая шляпка с желтоватым или голубоватым оттенком и характерными трещинками. Диаметр шляпки достигает 15 см
Охристая сыроежкаЖелтая шляпка выпуклой формы с загнутыми вовнутрь краями. Ножка массивная, плотная и сухая. Тонкие пластинки окрашены в кремовый цвет
Пищевая сыроежкаСветло-коричневая шляпка диаметром до 9 см иногда имеет розоватый оттенок. В сырую погоду шляпка становится немного липкой
Серая сыроежкаШляпка серая с пурпурным или оливковым оттенком, пластинки светло-кремовые. Ножка белая
Сине-желтая сыроежкаШляпка синеватая или лиловатая, с желтым или буровато-желтым центром. По мере роста из полушаровидной становится плоской. Морщинистая кожица плохо отделяется от мякоти
Цельная сыроежкаПлоская темно-коричневая или красно-бурая шляпка с углублением в центре и волнистыми краями. Липкая кожица легко отделяется от мякоти

У некоторых видов съедобных сыроежек есть ядовитые двойники. Посмотрев это видео, вы узнаете, как отличить зеленую сыроежку от бледной поганки:

Подготовка грибов

Чтобы сыроежки получились вкусными и не пропали уже через пару недель, их необходимо правильно подготовить.

Обратите внимание! Лесные грибы не должны долго лежать необработанными. Уже через несколько часов поверхность темнеет, а на следующий день они могут пропасть.

Сначала переберите грибы, выбрасывая подгнившие или очень изъеденные насекомыми. Далее нужно тщательно очистить их от прилипшего мусора, остатков земли, подрезать ножку почти до шляпки. Рекомендуется удалять пленку с поверхности шляпки, иначе она может стать причиной испорченной закатки.

После всех приготовительных процедур остается последний — вываривание или вымачивание. Грибники отдают предпочтение вымачиванию, но оно требует больше времени.

  • Вымачивание: на 1 кг сыроежек наливают в емкость 2 литра воды, добавляют столовую ложку поваренной соли, размешивают до полного ее растворения. Далее подготовленные грибы выкладывают в воду, накрывают так, чтобы они оказались под водой, и оставляют на 5 часов. После вымачивания грибочки промывают под проточной водой.
  • Вываривание: воду в таком же количестве, как и в первом варианте, солят и доводят до кипения, затем добавляют сыроежки и варят 10 минут. После воду сливают, и вываривание повторяется еще дважды. Каждый раз нужно снимать образующуюся пенку. В конце оставить сыроежки в дуршлаге, чтобы лишняя вода стекла.

В сыроежках присутствует молочная кислота, которая на вкус немного горчит. Такие нехитрые манипуляции позволят ее устранить.

Как мариновать грибы сыроежки в домашних условиях


Рецепт отличается простотой в приготовлении, а по вкусу грибочки понравятся абсолютно каждому. Они хороши в роли самостоятельной закуски, приправленной нерафинированным маслом и измельченным чесноком.

Для маринования понадобится:

  • сыроежки подготовленные и отваренные — 2 кг;
  • вода столовая — 1 л;
  • уксус концентрации 9 % – 0.4 л;
  • соль обычная — 40 г;
  • сахар — 10 г;
  • лавр — 4 листа;
  • перец душистый — 4 горошины;
  • гвоздика — 5 штук.

Маринованные сыроежки рецепт на зиму:

  1. Подготовить тару и крышки: вымыть с моющим, просушить, простерилизовать. На вышеуказанное количество продуктов используется банок обычно общей емкостью 2 — 2,5 литра.
  2. Подогреть воду на плите, засыпать соль, сахар, пряности перемешать. Довести до состояния кипения и не уменьшать огонь 5 минут.
  3. Ввести уксус, размешать и не уменьшать огонь еще пару минут.
  4. Выложить грибы в кастрюлю и варить 15 минут.
  5. Разместить грибы с маринадом по емкостям, закатать крышками.

Классический рецепт маринованных сыроежек


Состав:

  • сыроежки (отваренные) – 2 кг;
  • вода – 1 л;
  • уксус столовый (9-процентный) – 150 мл;
  • соль каменная – 40 г;
  • сахар-песок – 10 г;
  • лавровый лист – 4 шт.;
  • перец душистый горошком – 10 шт.;
  • гвоздика – 5 шт.

Способ приготовления:

  • Простерилизуйте банки, подготовьте крышки. Из указанного в рецепте количества ингредиентов выйдет как минимум две литровых банки, но лучше подстраховаться и приготовить банки общей емкостью 2,5 литра.
  • В кастрюлю налейте литр воды, всыпьте в нее соль и сахарный песок, положите перец, гвоздику и лавр.
  • Доведите воду до кипения и прокипятите 5 минут.
  • Влейте уксус, размешайте, кипятите еще 2 минуты.
  • Положите в маринад подготовленные грибы. Варите их четверть часа.
  • Разложите по стерилизованным банкам, залейте кипящим маринадом.
  • Закройте металлическими или капроновыми крышками. Если выбраны полиэтиленовые, то хранить заготовку зимой можно будет только в холодильнике или в подвальном помещении, где температура не поднимается выше 8 градусов. Закатанные металлическими крышками банки после остывания можно поставить в кладовку, где температура держится не выше 16 градусов.

Сыроежки, маринованные по классическому рецепту, универсальны – они придутся по вкусу каждому. Подавать их нужно с подсолнечным маслом, в идеале – нерафинированным. Еще лучше будет, если порезать в закуску немного чеснока.

Можно ли мариновать сыроежки на зиму?


Такие сыроежки получатся остренькими за счет хрена и чеснока, а листья смородины делают их крепкими и хрустящими. По вкусу выгодно отличаются на фоне классических маринованных грибов.

Ингредиенты:

  • сыроежки — 1 кг;
  • вода очищенная — 1 л;
  • укроп — 2-3 ветки;
  • листья смородины — 3 штуки;
  • корень хрена — 1 штука;
  • соль — 50 г;
  • сахар — 15 г;
  • перец черный — 10 горошин;
  • уксус 9 % – 40 мл.

Грибы сыроежки маринованные рецепт:

  1. Подготовить банки и крышки.
  2. Подготовить грибы — очистить, вымыть, выварить.
  3. Промыть под проточной водой зелень, чеснок и хрен для маринования.
  4. На дно тары разместить укроп, по 2 кусочка корня, поровну листья смородины, зубчиков чеснока, горошек.
  5. Сверху выкладываем подготовленные заранее грибы.
  6. Готовим маринад: воду довести до кипения, растворить сахар и соль, влить уксус, кипятить минут 5-7.
  7. Разлить маринад в каждую банку и закупорить.

Лучшие рецепты маринованных сыроежек на зиму

Несколько рецептов с фото поведают о том, как правильно делать маринованные сыроежки на зиму. Может удивить содержание большого количества специй и пряностей. Однако это необходимо, ведь предварительное вываривание забирает у грибов значительную часть их аромата и вкуса.

Простой рецепт маринованных сыроежек на зиму

Этот рецепт называют базовым. На его основе создаются и другие, с включением разнообразных наполнителей. Чтобы законсервировать 2 кг сыроежек, берут:

  • воду – 1 л;
  • пищевой уксус – 150 мг;
  • перец горошком – 4 шт.;
  • душистые листики лавра – 4 шт.;
  • соль – 4 ст. л.;
  • сахар — 1 ст. л.;
  • душистая гвоздика – по желанию.

Подготовительные действия перед началом маринования заключаются в следующем:

  1. Стерилизуют две литровые банки и крышки к ним.
  2. Отваривают в соленой воде перебранные и промытые грибы.

Для маринования сыроежек на зиму по этому рецепту делают обычную заливку, применяемую во многих случаях:

  1. В воду, приготовленную для маринования, кладут сыпучие ингредиенты (сахар и соль), специи (перец, лавр, гвоздику).
  2. Душистый сбор кипятят в течение пяти минут, добавляют уксусную кислоту.
  3. Подготовленные сыроежки закладывают в маринад и проваривают.
  4. Грибы вынимают шумовкой, расфасовывают.
  5. Наливают в банки маринад, заполняя их по самое горлышко, герметично закрывают крышками.
  6. Ждут остывания и уносят в темное прохладное место.

Совет! Маринованные сыроежки можно закрыть и капроновыми крышками, но тогда хранить банки придется в холодильнике.

Маринованные сыроежки с луком

Это очень интересный рецепт, по которому можно замариновать сыроежки на зиму с репчатым луком. Они получаются нежными и аппетитными, так как лук способствует усилению мягкости грибов.

Вот расклад продуктов на 2 кг сыроежек:

  • фильтрованная вода – 1 л;
  • столовый уксус – 150 мг;
  • лук репчатый – 0,5 кг;
  • сахарный песок – 1 ст. л.;
  • кухонная соль – 5 ‎ст. л.

Набор специй – традиционнен:

  • лавровый лист – 5 шт.;
  • душистый перец – 5 горошин;
  • душистая гвоздика – 3 шт.

Проводят предварительную подготовку тары, затем готовят маринад. Ход работы следующий:

  1. Для маринада ставят на огонь воду, кладут в нее крупно порезанную луковицу, соль и сахар, специи.
  2. Ждут закипания и добавляют уксусную кислоту.
  3. Подготовленные сыроежки раскладывают по банкам, заливают горячим маринадом и герметично закрывают крышками.
  4. Банки оставляют при комнатной температуре для остывания.

Такую консервацию зимой хранят в холодильнике. Перед подачей в маринованные сыроежки добавляют мелко нарезанную луковицу, заливают растительным маслом.

Как замариновать сыроежки с хреном

Маринованные на зиму с листьями хрена сыроежки получаются пикантными и ароматными, ведь по рецепту в грибы добавляют много специй. Блюдо придется по вкусу тем, кто любит «поострее». Основные ингредиенты таковы:

  • сыроежки – 1,5 кг;
  • листья хрена – 5 — 10 шт.;
  • чеснок – 1 головка;
  • укроп и петрушка – по небольшому пучку;
  • листья лавра – 10 шт.;
  • соль – 80 г;
  • набор специй (черный и белый перец, имбирь, гвоздика).

Сыроежки чистят, моют и отваривают в слегка подсоленной воде. После того как они опустятся на дно, их достают шумовкой и откидывают на дуршлаг, дают стечь. Следующим этапом начинают маринование:

  1. В банки кладут слой листьев хрена, затем грибы, смешанные с измельченным чесноком и специями, сверху — листья хрена и так далее.
  2. Заполняют банку, чередуя ингредиенты.
  3. Последним слоем должны идти листья хрена. Их накрывают марлей и кладут гнет.
  4. Убирают маринованные сыроежки в прохладное место для настаивания в течение месяца.

Маринованные по этому рецепту сыроежки зимой исчезают очень быстро.

Вкусные маринованные сыроежки с зеленью

Используя при мариновании сыроежек разнообразную зелень, можно сделать закуску особенно ароматной и оригинальной. Чтобы законсервировать на зиму полуторалитровую баночку понадобятся следующие продукты:

  • очищенная вода – 1 л;
  • сыроежки – 2 кг;
  • уксусная кислота 9% – 100 мл;
  • репчатый лук – 100 г;
  • душистый перец – 5 горошин;
  • соль и сахар — по 50 г.

Кроме того, следует взять по небольшому пучку орегано, тимьяна, кинзы, базилика. Маринованные сыроежки делают следующим образом:

  1. Зелень тщательно моют и шинкуют, репчатый лук нарезают полукольцами.
  2. Выкладывают лук и зелень на дно стерилизованной банки.
  3. Готовят маринад. Для этого в кипящую воду добавляют соль, сахар, горошки перца.
  4. Еще раз кипятят и заливают уксус.
  5. Соединяют маринад с главным ингредиентом и варят их около 20 мин., а после заливают в банку.
  6. Перед тем как герметично закрыть, ее стерилизуют на водяной бане.

Банки с маринованными грибами оставляют в темном месте до полного остывания, после чего убирают на хранение в погреб.

Как быстро замариновать сыроежки на зиму

Этот рецепт дает возможность замариновать сыроежки на зиму быстро, благодаря чему можно попробовать грибы в тот же день, когда они были приготовлены. Настаивать их в маринаде придется в течение нескольких часов. На 1 кг сыроежек берут:

  • чистую воду – 1 л;
  • репчатый лук – 1 небольшую головку;
  • уксус столовый – 50 мг или 2 ст. л.;
  • перец душистый – 5 горошин;
  • лавр – 2 листочка;
  • соль и сахар по 30 г;
  • растительное масло – 50 мг.

Последовательность действий:

  1. В кипящую воду кладут сахар, соль, уксус, перец, лавровые листья и проваривают в течение 5 минут.
  2. Подготовленные грибы заливают маринадом, добавляют нарезанный кольцами лук и растительное масло.
  3. Варят смесь на медленном огне около четверти часа.
  4. Разливают по чистым, стерилизованным банкам.

Такие маринования зимой хранят обязательно в холодильнике. Желательно употребить их в течение месяца – двух.

Как приготовить сыроежки на зиму в банках с листом смородины

Чтобы вкусно замариновать на зиму сыроежки, можно добавить во время приготовления в качестве специи листья черной смородины. Это сделает маринованные грибы ароматными и хрустящими:

  • сыроежки – 1 кг;
  • фильтрованная вода – 1 л;
  • небольшой корень хрена – 1 шт.;
  • чеснок – 5 зубчиков;
  • зеленый укроп – 3 зонтика;
  • листья смородины – 3 шт.;
  • перец душистый – 3 горошины;
  • уксус 9% – 40 мг;
  • соль – 5 ст. л.;
  • сахар – 1,5 ст. л.

Приготовление к процессу маринования заключается в последовательности действий:

  1. Готовят тару: тщательно моют ее, прогревают над паром.
  2. Сыроежки проваривают в подсоленной воде, удаляя неприятную горчинку.
  3. Тщательно промывают и нарезают корень хрена и зелень.
  4. Очищают зубчики чеснока.

В ходе маринования основные ингредиенты и заливку готовят в разных емкостях, а, затем соединяют вместе:

  1. На дно баночек кладут зонтики укропа, кусочки корня хрена и другие специи (чеснок, листики смородины, перец).
  2. На специи укладывают подготовленные сыроежки.
  3. Для маринада в кипящую воду добавляют соль и сахар, заливают уксус и еще несколько минут кипятят.
  4. Заливают в банки готовый маринад, несколько минут настаивают и герметично закрывают.

Зимой хранят банки с маринованиями в прохладном месте.

Как мариновать сыроежки на зиму в банках


Маринование таким способом делается очень быстро, а закуска получается с приятным нежным ароматом и привкусом, который только подчеркивает натуральный вкус грибов, не перебивая его. Хрустеть, к сожалению, они не будут, но это ничуть не испортить впечатление от блюда.

Продукты для маринования:

  • подготовленные сыроежки — 700 г;
  • гвоздика — 5-7 штук;
  • лавр — 3 листа;
  • зелень в свежем виде (орегано/чабер/тимьян/базилик/сельдерей) — 3 веточки;
  • средняя луковица — 1 головка;
  • вода столовая — 800 мл;
  • винный уксус — 1/3 стакана;
  • морская соль (можно обычную) — 60 г;
  • душистый перец — 1,5 чайной ложки.

Как замариновать грибы сыроежки:

  1. Подготовить грибы, отварить, большие порезать.
  2. Подготовить тару, простерилизовать.
  3. Поместить воду на огонь, ввести соль, уксус, перец, лаврушку, гвоздику. Довести до кипения.
  4. На дно тары выложить веточки зелени, резаный мелким кубиком лук.
  5. В кипящий маринад добавить грибы, нагревание поставить на минимум, варить все 1/4 часа.
  6. Разлить маринад с грибами по банкам, закрыть или закатать крышками.
  7. Через несколько часов, когда закатки остудятся, можно убрать в прохладное место.

Рецепт заморозки сыроежек на зиму

Если у вас нет времени или желания на засолку или приготовление икры, а сохранить урожай грибов нужно во что бы то ни стало, на помощь придет заморозка сыроежек на зиму, рецепт которой очень прост. Достаточно перебрать, почистить и вымыть грибы, хорошенько их просушить. Затем нужно сложить их в плотные полиэтиленовые пакеты для заморозки, стараясь оставлять в них как можно меньше воздуха, герметично закрыть их и отправить в морозилку.

Как замариновать сыроежки на зиму быстро

Этот рецепт интересен тем, что грибочкам нет необходимости настаиваться несколько недель, и их не нужно закрывать. Маринованные сыроежки уже через несколько часов можно подавать на стол в качестве закуски. Прекрасный способ подготовить закуску к вечернему застолью, или использовать для приготовления блюда из нескольких составляющих.

Ингредиенты:

  • головка репчатого лука — 1;
  • соль — 1/2 чайная ложка;
  • уксус столовый — 2 столовых ложки;
  • черный молотый перец — 1/5;
  • растительное масло — 3 столовых ложки.

Как мариновать сыроежки в домашних условиях:

  1. Подготовить грибочки — очистить, отварить, подсолить.
  2. Нарезать колечками или полукольцами лук.
  3. Соединить в одной емкости все ингредиенты, тщательно перемешать, оставить под крышкой на 2 часа, можно немного больше. Время от времени перемешивать.

Сыроежки на зиму: требования к первичной обработке

Перед тем как приступить к приготовлению блюд из сыроежек, потребуется провести обязательную обработку грибов. Для этого их сортируют по размеру, тщательно очищают от загрязнений. После этого их:

  • промывают под струей холодной воды;
  • помещают в холодную воду (в кастрюле) — из расчета вдвое больше, чем объем грибов;
  • на среднем огне доводят до кипения, и проваривают около получаса.

После закипания можно добавлять:

  • соль;
  • лавровый лист и листья различных растений;
  • черный душистый перец (горошком).

Пену, образовавшуюся на поверхности отвара, снимают шумовкой. Сам грибной отвар будет непригоден в пищу.

Перед засолкой сыроежек будет достаточно их сортировки, очистки и промывки.

Как мариновать сыроежки на зиму

Вкусные и ароматные сыроежки получаются по этому рецепту. Ингредиентов — минимум, времени надо тоже не очень много.

Необходимые ингредиенты:

  • свежие сыроежки — 1 кг
  • соль поваренная — 1-1. столовых ложки
  • сахар песочный — 1/2 -1 столовая ложка
  • уксус обычный — 70 мл
  • лавровый лист — 2 штуки
  • укроп сушеный — 1-2 зонтика
  • семена горчицы — 1/2 столовой ложки

Как готовить сыроежки на зиму:

  1. Грибы очистить, отварить, снимая пену. Выложить на дуршлаг.
  2. Банки вымыть, простерилизовать. То же самое сделать с крышками.
  3. Поставить воду для маринада на огонь, всыпать соль, сахар, довести до кипения.
  4. В маринад добавить уже подготовленные «пуговки», огонь сделать тихим и варить 20-30 минут.
  5. Разложить ложкой сыроежки в тару, залить маринадом и закатать крышками.

Классический рецепт соления грибов сыроежек на зиму в банках

Солёные сыроежки нравятся всем без исключения, да и на праздничном столе без них бывает очень «скучно». А под рюмочку сорокаградусной – это идеальная закуска! Предлагаем вам классический рецепт соления грибов сыроежек на зиму в банках.

  • Сыроежки (отварить) – 1,5 кг;
  • Соль – 70 г;
  • Укроп свежий – 1 небольшой пучок;
  • Лавровый лист – 3-4 шт.;
  • Смородиновые и/или вишнёвые листья – 10 шт.;
  • Зёрна чёрного перца – 10-15 шт.;
  • Чеснок – 4-5 зубочков.

Чеснок нарезать слайсами, а укроп мелко измельчить.

  1. Свежие листья смородины и/или вишни хорошо вымыть и обсушить, оставив их в проветриваемом помещении.
  2. Банку объёмом 3 л следует простерилизовать и тоже высушить.
  3. На дно банки выложить часть свежих листьев и 20 г соли, сверху распределить слой грибов.
  4. Каждый слой плодовых тел должен быть пересыпан солью, чесноком, укропом, лавровым листом и чёрным перцем.
  5. Накройте сыроежки несколькими смородиновыми листьями, положите сверху марлю и поставьте груз.
  6. Через неделю-другую проверьте закуску на готовность. Подавайте блюдо, заправив его растительным маслом и добавив полукольца репчатого лука.

Рекомендации по хранению и употреблению сыроежек

Чтобы грибочки смогли долго храниться и «дойти» до нужной кондиции, придерживайтесь простых советов:

  1. После маринования грибы должны выдерживаться минимум месяц. Этого времени достаточно, чтобы они пропитались вкусами маринада.
  2. Маринованные грибочки нельзя хранить больше года.
  3. Чтобы предотвратить появление плесени в банке с закаткой, перед закрытием банки нужно налить немного растительного масла (не больше столовой ложки). Масло будет плавать сверху и не даст образоваться плесени. На вкус это никак не повлияет.
  4. Если вы не очень хорошо разбираетесь в грибах, и боитесь отравления, проверьте их таким образом: в период отваривания грибов добавьте небольшую головку лука. Если овощ начнет сильно темнеть, приобретая оттенки от зеленого до синего — грибы есть не стоит. Если же луковка осталась светлой — грибочки вполне съедобны.
  5. Во время подготовительного процесса большие грибочки режут на 4-6 частей, в зависимости от размера шляпки. Маленькие оставляют целыми.
  6. Нельзя мариновать сыроежки и другие виды грибов вместе. Каждый сорт имеет свои особенности подготовки, вкуса, свойств, срок годности.
  7. Перед употреблением маринованные сыроежки рекомендуется промыть и прокипятить около 20 минут. В воду добавляют на 1 литр 1 чайную ложку соли и 1/2 чайной ложки лимонной кислоты. Все же закатки являются своеобразным полуфабрикатом, а не готовым блюдом, как мы привыкли считать.

Даже если вы не большой любитель заниматься закатыванием, стоит потратить немного времени и заготовить пару баночек сыроежек. Зимой ваши труды будут вознаграждены настоявшимися хрустящими грибочками.

Прекрасным дополнением к вашему обеденному столу также могут стать маринованная алыча, цветная капуста в маринаде или соленая спаржа, рецепты приготовления которых вы без труда найдете на нашем сайте.

Russula – обзор | Темы ScienceDirect

Морфология и анатомия

В поверхностных горизонтах почвы большинства лесов умеренного пояса можно обнаружить тонкие эктомикоризные корешки (рис. 7.7), проходящие через поверхностные слои почвы, богатые разлагающимся растительным опадом. Их короткие боковые ветви, шириной около миллиметра или меньше, отличаются по цвету и поверхностным характеристикам от родительской оси и, как правило, толще. Их отличительный внешний вид обусловлен их поверхностным покрытием из грибковой ткани, эктомикоризной мантии или влагалища.Внутри корня живые клетки корня взаимодействуют с гифами грибов, которые проникают между ними, образуя сеть Хартига, названную в честь немецкого лесного биолога Роберта Хартига.

Рисунок 7.7. Эктомикоризные морфотипы из буковой ( Fagus sylvatica ) лесной почвы; (а) Laccaria sp., (б) Lactarius sp., (в) Coenococcum sp., (г) Russula sp.

Источник: Джон Бейкер.

Мантия (рис. 7.2d) представляет собой барьер из живой ткани между впитывающим корешком и почвой. Он непрерывно развивается по мере роста корня, подавляя развитие корневых волосков и образуя оболочку, похожую на носок, толщиной в несколько клеток, покрывающую весь кончик корня.По мере появления новых корней они заселяются гифами, которые могут происходить из ECM, уже существующих на корне, из спор или из мицелия, уже растущего на других корнях или подстилке растений. Некоторые виды легко колонизируются из спор, другим требуется уже установленная основа на живом корне, чтобы установить ассоциации с дальнейшими корнями. На начальных стадиях корневой инфекции гифы растут между эпидермальными клетками, чтобы установить интерфейс обмена питательными веществами. ЭЦМ покрытосеменных и голосеменных различаются по радиальной протяженности колонизированной ткани корня.У покрытосеменных заселяется только эпидермальный слой, но у голосеменных гифы проникают и между внешними кортикальными клетками. Во всех случаях гифы ограничены апопластным пространством за пределами плазматической мембраны клетки-хозяина и, таким образом, остаются вне эндодермы корня. Характеристики мантии являются результатом изменений в форме роста обоих партнеров по мере развития ассоциации. Растение может быть вызвано колонизацией с образованием новых боковых корешков, и их структура типична для видов грибов, так что разные грибы образуют разные характерные морфотипы ВКМ даже на одном и том же виде дерева (Рисунок 7.7). Грибковая ассоциация может стимулировать радиальное удлинение кортикальных клеток, приводя к большей потенциальной площади поверхности контакта для обмена питательными веществами и создавая утолщение корня, характерное для некоторых морфотипов ВКМ. Ткань мантии грибов формируется либо путем обширного переплетения нитей гиф, либо путем деления клеток с образованием изодиаметрических клеток. Могут возникать дифференцированные типы клеток, характерные для данного вида, такие как продуцирующие латекс клетки у Lactarius . Пигменты придают каждому морфотипу характерный цвет: пурпурный, черный, белый и оттенки от темно-коричневого до бледно-желтого.Морфотипы также различаются по тому, производят ли они мицелиальные разрастания из мантии в почву, и по степени такого разрастания. Виды широко различаются по природе и размеру исследуемого мицелия. Некоторые, как представители рода Boletales Suillus, образуют обширные сети с транслокационными системами мицелиальных тяжей (Глава 5, стр.176), в то время как другие, такие как обычный ECM рода Russula , просто покрывают корешок гладкой оболочка без видимого исходящего мицелия.Широко распространенный черный ЕСМ, образованный аскомицетом Coenococcum geophilum , можно узнать по его волосатой поверхности, ощетинившейся меланизированными гифами.

Продолжительность жизни корешков ECM представляет интерес в контексте связывания углерода лесной почвы посредством эктомикоризы, но ее трудно измерить. Время пребывания углерода (по данным 14 C) в ECM нескольких видов (идентифицированных по морфотипу и RFLP) исследовали в лесах смешанной сосны и можжевельника. Время оборота углерода корешков ВКМ, составляющее 4-5 лет, позволяет предположить, что они были относительно долгоживущими по сравнению с несвязанным мицелием и грибами.Многие переменные, вероятно, влияют на продолжительность жизни эктомикоризных грибов на корешках, в том числе вид грибов, скорость роста корней, выпас грибов почвенными беспозвоночными и состояние питательных веществ в почве. Вклад мертвых эктомикоризных грибов в почвенный углерод является значительным и дополнительно обсуждается ниже.

Сеть Hartig – это интерфейс между гифами грибов и клетками корней растений, где развитие и физиология обоих партнеров объединяются в функциональную единицу.Здесь тонкие гифы разветвляются в виде пальцевидных отростков на поверхности растительных клеток и через межклеточные средние ламели. Только при относительно небольшом количестве типов ассоциации или при старении микоризы эти гифы проникают в растительную клетку с внутриклеточным ростом. Вместо этого обмен происходит как через стенки гифа, так и через стенки растительных клеток, хотя стенки растительных клеток тоньше на границе сети Хартига. Рост грибов ограничивается апопластическим пространством между клетками корня, свободно доступным для почвенного раствора.Гифы не пересекают энтодерму, цилиндр ткани, который содержит центральную проводящую ткань дерева. Из сравнительных геномных исследований близкородственных эктомикоризных и сапротрофных базидиомицетов выясняется, что эволюция привычки ВКМ сопровождается расширением и уточнением семейств генов пектиназ и глюканаз, активных в гидролизующих компонентах внутриклеточной средней ламеллы, что позволяет предположить, что ферментативный лизис грибком может облегчить контакт между растительными и грибковыми клетками в сети Хартига.

Последовательность взаимодействий корень-грибок, приводящая к образованию эктомикоризы, начинается, когда гриб хемотропно привлекается для роста к ближайшему корню, стимулируемого корневыми экссудатами, включая флавоноиды и стриголактоны. Обмен сигналами между хозяином и грибком во время установления и поддержания эктомикоризного симбиоза был рассмотрен на молекулярном уровне в модели взаимодействия между Laccaria bicolor и Populus sp. Когда партнеры вступают в контакт, наиболее высоко регулируемым грибковым белком является MiSSP7 , один из группы небольших секретируемых белков ( MiSSP ), выделяемых грибком.Этот белок можно визуализировать in situ в области развивающейся сети Хартига с помощью иммуно-локализации (рис. 7.8). MiSSP7 проникает в растительную клетку посредством активного фосфатидилинозитол-3-фосфат-опосредованного эндоцитоза и направляется в ядро, где действует как фактор транскрипции, влияющий на экспрессию генов, участвующих в защите, ремоделировании клеточной стенки и передаче сигналов. MiSSP7 имеет некоторые общие черты с описанным выше белком SP7 AMF, который подготавливает корень для симбиоза еще до физического контакта между партнерами.Оба являются эффекторными белками, подобными широко консервативным эффекторам патогенов растений (Глава 8, стр. 252), и обладают одинаковой ролью подавления устойчивости и установления биотрофного взаимодействия между клетками растений и грибов. Трансформанты Laccaria bicolor со сниженной экспрессией MiSSP7 не вступают в симбиоз с корнями тополя.

Рисунок 7.8. Иммуно-локализация высокоэкспрессированного эффекторноподобного белка грибов в кончике эктомикоризного корня Populus trichocarpa – Laccaria bicolor .Поперечный разрез корня тополя, заселенного симбиотическим эктомикоризным грибом L. bicolor . Зеленый сигнал представляет собой иммуно-локализацию эффекторного белка грибов MiSSP7, высоко экспрессируемого в гифах L. bicolor , в то время как окрашивание йодидом пропидия выделяет клеточные стенки клеток корня.

Источник: Джонатан Плетт и Фрэнсис Мартин.

После первоначального выброса грибка MiSSP белковые маркеры устойчивости растений, вызванные при первом контакте, снижаются, а ауксиновые ответы растений изменяются, что приводит к индукции боковых корней, формируя типичный морфотип ЕСМ.Когда корень принимает грибковую колонизацию и начинает формировать суставные ткани с грибком, транспортные белки, участвующие в обмене питательных веществ, начинают активироваться. Геном Laccaria bicolor имеет 15 генов, характеризуемых как высокоаффинные переносчики H + / глюкозы, которые экспрессируются по мере развития микоризы и, вероятно, участвуют в захвате глюкозы из клеток-хозяев. По мере ускорения метаболизма глюкозы в грибах, питаемого сахарами, синтезируемыми листьями и перемещающимися в сети Хартига корней, корневая система ЕСМ становится сильным приемником углеводов для дерева.По оценкам, от 10% до 20% фотосинтата растения поступает в корневую систему ЕСМ.

Геномные исследования выявляют дополнительные функциональные группы генов, активируемых в симбиозе ECM, которые, как считается, играют роль в создании и поддержании взаимодействия между растениями и грибами. Ферменты ремоделирования клеточной стенки, в том числе пектиназы, глюканазы и пептидазы, по-видимому, помогают гифам проникать между клетками в апопластных средних ламеллярных пространствах коры корня.Связанные с симбиозом кислые полипептиды, выделяемые грибком во время образования ВКМ, имеют общие черты с адгезинами грибковых патогенов животных и растений, поэтому могут способствовать прикреплению гиф к клетке-хозяину. Третья группа белков с повышенным уровнем регуляции – это гидрофобины, секретируемые белки, которые образуют амфипатический монослой на поверхностях с одной гидрофильной и одной гидрофобной сторонами. Они могут быть вовлечены в покрытие мантии (и экстрарадикальных шнуров), делая кончик микоризного корня герметичной системой. Можно ожидать, что геномные исследования, такие как программа секвенирования агарикомицетов Объединенного института генома, выявят разнообразие функций ЕСМ-грибов, населяющих лесные почвы.

Ассоциации между партнерами ECM способствуют почвенные бактерии разных родов, включая Pseudomonas , Rhodococcus , Streptomycetes , Burkholderia и Bacillus , известные как бактерии-помощники микоризы . Они колонизируют поверхность гиф грибов, стимулируют рост гиф и могут даже жить в гифах как эндобактерии. Они способствуют усвоению питательных веществ ЕСМ, защищают растения-хозяева от патогенов и, вероятно, важны для роста деревьев в лесах и питомниках, но мы мало знаем о механизме, с помощью которого они способствуют образованию и функционированию микоризы.Первая последовательность генома вспомогательной бактерии, Pseudomonas fluorescens , грамотрицательной палочковидной бактерии, выделенной из спорокарпа эктомикоризного гриба Laccaria bicolor, , была опубликована в 2014 году. такие источники, как мертвая древесина и корни деревьев, могут десятилетиями сохраняться в лесной подстилке (в отличие от эфемерного мицелия AMF, которое обновляется за несколько дней). Некоторые виды эктомикоризных грибов могут создавать обширные и устойчивые сети кормодобывания, питаемые деревьями-хозяевами, которые, в свою очередь, поглощают минеральные питательные вещества для хозяина из почвы, опада листьев и даже из пыльцы (Рисунок 7.9). Способность эктомикоризных грибов разлагать лигнин / гумус варьирует от рода к родам. Сравнительная геномика предполагает, что Laccaria потеряла большую часть своей способности к разложению древесины, Paxillus разлагает сложные органические вещества так же, как коричневые гнили, а видов Cortinarius , которые обычно встречаются в хорошо укоренившихся лесах, имеют полный набор Гены Mn-пероксидазы и, вероятно, действуют как микоризные гнили. Обнаружены интересные параллели между развитием сапротрофной коричневой гнили и эктомикоризных режимов питания у базидиомицетов.К кладе Boletales, например, относятся как разрушающий древесину гриб сухой гнили Serpula lacrymans , так и его ближайший известный родственник, эктомикоризный Austropaxillus , оба из которых в процессе эволюции утратили многие разрушающие древесину ферменты.

Рисунок 7.9. На фотографиях (а) – (в) показано последовательное развитие эктомикоризных сеянцев березы Betula pendula , ассоциированных с эктомикоризой Paxillus invutus в камерах наблюдения, содержащих поддоны с подстилкой бука (F), сосны (P) и березы ( Б) через 8, 35 и 90 дней после посадки помета.Первоначальное заселение подстилки сопровождается повышенным ростом растений по сравнению с d, контрольным растением с микоризой без добавления подстилки.

Источник: Perez-Moreno and Read (2000).

Болезнь (грибы северного штата Мэн) · iNaturalist

Резюме

4

Russula emetica , широко известная как sickener , emetic russula или pomiting russula , является грибом базидиомицетом и типовым видом рода Russula .У него красный, выпуклый или плоский колпачок диаметром до 8,5 см (3,3 дюйма) с кутикулой, которую можно отделить почти до центра. Жабры от белого до бледно-кремового цвета, расположены близко друг к другу. Гладкий белый стебель имеет длину до 10,5 см (4,1 дюйма) и толщину 2,4 см (0,9 дюйма). Первое описание …

Описание

5

колпачок выпуклый гимений приросший

Липкая шляпка R. emetica имеет ширину 2,5–8,5 см (1,0–3,3 дюйма), форма варьируется от выпуклой (у молодых экземпляров) до уплощенной, иногда с центральным углублением, а иногда с неглубокой макушкой.Это ярко-алый или вишнево-красный цвет, а в зрелом возрасте на краях появляются тонкие радиальные бороздки, простирающиеся на 2–7 мм (0,08–0,3 дюйма) к центру шляпки. Кутикула легко очищается от шляпки почти до центра. Хрупкая мякоть белая (или с красным оттенком непосредственно под кутикулой шляпки), имеет толщину 4–9 мм (0,2–0,4 дюйма) и имеет очень острый и острый вкус. Жабры расположены близко друг к другу, от белого до кремово-белого цвета, прикрепляются к стеблю от сросшихся до придатков или полностью свободны.Они промежуточны (содержат поперечные жилки в промежутках между жабрами) и иногда раздваиваются у края шляпки. Плодовые тела имеют слегка фруктовый или пряный запах.

Белый стебель имеет размеры 4,5–10,5 см (1,8–4,1 дюйма) в длину и 0,7–2,4 см (0,3–0,9 дюйма) в толщину и примерно такой же ширины по всей длине, хотя может быть немного толще у основания. Поверхность сухая и гладкая, иногда с небольшими продольными бороздками. Он либо набит (наполнен хлопковой сердцевиной), либо частично полый, без кольца или частичной вуали.

Russula emetica дает белый или желтовато-белый отпечаток спор. Споры имеют примерно эллиптическую или яйцевидную форму, с сильно бородавчатой ​​и частично сетчатой ​​(паутинообразной) поверхностью. Они имеют размеры 8,8–11,0 на 6,6–8 мкм и являются амилоидными, что означает, что в реактиве Мельцера они окрашиваются в синий, голубовато-серый или черный цвет. Базидии (споровые клетки) булавовидные, четырехспоровые, гиалиновые (полупрозрачные) размером 32,9–50 на 9,0–11,6 мкм. Цистидии, расположенные на жаберной поверхности (плевроцистидии), имеют несколько цилиндрическую или булавовидную или веретенообразную форму, их размеры 35–88 на 7.3–12,4 мкм. Они желтоватые и содержат гранулированное содержимое. Хейлоцистидии (обнаруживаются по краям жабр), которые по форме похожи на плевроцистидии, тонкостенные, гиалиновые, размером 14–24 на 4,4–7,3 мкм. На гифах отсутствуют зажимные соединения.

Красные пигменты этой и других сыроебов до некоторой степени растворимы в воде, а плодовые тела часто бледнеют или тускнеют под дождем или солнечным светом; цвет шляпки более старых экземпляров может бледнеть до розового или оранжевого, или на них появляются белые пятна.Основной пигмент, отвечающий за красный цвет плодовых тел, называется руссуляродин , но о его химическом составе мало что известно.

Распространение и среда обитания

5

Подобно всем видам Russula , R. emetica является микоризным и образует взаимовыгодные партнерские отношения с корнями деревьев и некоторых травянистых растений. Предпочтительными растениями-хозяевами являются хвойные породы, особенно сосна. Плодовые тела растут поодиночке, россыпью или группами в сфагновом мхе у болот, в хвойных и смешанных лесах.Иногда грибок плодоносит на перегное или сильно гнилой древесине. Гриб известен из Северной Африки, Азии, Европы и Северной Америки и может быть очень распространен на местном уровне. Существуют некоторые сомнения относительно степени ареала его ареала в Северной Америке, поскольку в некоторых наблюдениях упоминается родственный R. silvicola ; Первоначально название “Russula emetica” часто применялось к любому красноголичному белому горошку Russula . Наблюдения в Австралии теперь относятся к так же окрашенному в R. persanguinea .

Многолетнее полевое исследование роста производства R. emetica на плантации сосны обыкновенной в Шотландии показало, что общая урожайность составила 0,24–0,49 миллиона грибов с гектара в год (примерно 0,1–0,2 миллиона грибов / акр в год). , что соответствует сырой массе 265–460 кг на гектар в год (49–85 фунтов / акр в год). Урожайность была максимальной с августа по октябрь. Продолжительность жизни грибов оценивалась в 4–7 дней. При изучении грибного разнообразия эктомикоризных видов в ельнике Ситкинском, R.emetica входила в пятерку доминирующих грибов. Сравнивая частоту образования плодовых тел в 10-, 20-, 30- или 40-летних насаждениях, R. emetica был наиболее плодовитым в последнем.

Похожие виды

5

Russula emetica – это один из более чем 100 красношапочных Russula видов, известных во всем мире. Родственный сикер из бука ( R. nobilis ) встречается под буком в Европе. Многие, например кровавая хрупкая жабра ( R.sanguinaria ), несъедобны; этот вид можно отличить от R. emetica по красноватому отливу на его стебле. R. aurea , однако, съедобен. У него желтый стебель, жабры и мякоть под красной шляпкой. Съедобный вид R. rugulosa , распространенный в смешанных лесах на востоке и севере США, имеет морщинистую и прыщавую кутикулу, кремовые споры и мягкий вкус. Другой несъедобный вид, R. fragilis , имеет зубчатые жабры, а его стебель окрашен в синий цвет от нафтола.Необычный европейский подвид R. emetica longipes отличается более длинным стеблем и охристыми жабрами. Более светлый европейский гриб R. betularum , встречающийся в хвойных лесах и вересковых пустошах, иногда считается подвидом R. emetica . R. nana распространен только на арктических и субарктических высокогорных лугах, где распространены карликовая ива ( Salix herbacea ) или альпийская толокнянка ( Arctostaphylos alpina ).

Резюме

5

Russula emetica , широко известная как sickener , emetic russula или pomiting russula , является грибом базидиомицетом и типовым видом рода Russula .У него красный, выпуклый или плоский колпачок диаметром до 8,5 см (3,3 дюйма) с кутикулой, которую можно отделить почти до центра. Жабры от белого до бледно-кремового цвета, расположены близко друг к другу. Гладкий белый стебель имеет длину до 10,5 см (4,1 дюйма) и толщину 2,4 см (0,9 дюйма). Впервые описанный в 1774 году, гриб широко распространен в Северном полушарии, где он растет на земле во влажных лесах в микоризной ассоциации с хвойными деревьями, особенно сосной.

Таксономия

5

Russula emetica впервые была официально описана как Agaricus emeticus Якобом Кристианом Шеффером в 1774 году в его серии исследований грибов Баварии и Пфальца, Fungorum qui в Баварии и Палатинату около Ratisbonam nascunturicones. Christian Hendrik Persoon поместил его в его нынешний род Russula в 1796 году, где он и остался. Согласно номенклатурной базе данных MycoBank, Agaricus russula является синонимом R. emetica , который был опубликован Джованни Антонио Скополи в 1772 году, на два года раньше, чем описание Шеффера. Однако это имя недоступно, так как имя Персона является санкционированным. Дополнительные синонимы включают Amanita rubra (1783) Жана-Батиста Ламарка и новую комбинацию Agaricus ruber (1805) Августина Пирама де Кандолля.Специфический эпитет происходит от древнегреческого emetikos / εμετικος «рвотное» или «вызывающее рвоту». Точно так же его общие названия sickener , emetic russula и russula также относятся к этому атрибуту.

Russula emetica – типовой вид рода Russula . Согласно внутриродовой классификации Рольфа Зингера Russula , это также тип секции Russula .В альтернативной классификации, предложенной Анри Романьези, это типовой вид подраздела Emeticinae . Молекулярный анализ европейского вида Russula определил, что R. emetica группируются в кладу с R. raoultii , R. betularum и R. nana ; более поздний анализ подтвердил тесную филогенетическую связь между R. emetica и двумя последними Russula.

Токсичность

5

Как следует из названия, сикер несъедобен, хотя и не так опасен, как иногда описывают в старых справочниках по грибам.Симптомы в основном имеют желудочно-кишечный характер: тошнота, диарея, рвота и колики в животе. Эти симптомы обычно начинаются через полчаса-три часа после проглатывания грибов и обычно проходят спонтанно или вскоре после того, как проглоченный материал был изгнан из кишечного тракта. Активные агенты не идентифицированы, но предполагается, что они представляют собой сесквитерпены, которые были выделены из родственного рода Lactarius и из Russula sardonia .Сесквитерпеноиды, которые были идентифицированы из R. emetica , включают ранее известные соединения лактароруфин А, фурандиол, метоксифурановый спирт и неназванное соединение, уникальное для этого вида.

Горький вкус исчезает при приготовлении, и в этом случае говорят, что он пригоден для употребления в пищу, хотя употребление в пищу не рекомендуется. Раньше гриб широко ели в странах Восточной Европы и России после пропарки (которая выводит токсины), а затем соления или маринования. В некоторых регионах Венгрии и Словакии кутикулу шляпки удаляют и используют в качестве приправы для гуляша.Как известно, красная белка ( Sciurus vulgaris ) и американская белка ( Tamiasciurus hudsonicus ) добывают, хранят и поедают R. emetica . Другие существа, которые были задокументированы поеданием гриба, включают улитку Mesodon thyroidus , несколько видов слизней (в том числе Arion ater , A. subfuscus , A. Intermedius , Limax maximus , L. cinereoniger , и Deroceras reticulatum ), плодовые мухи Drosophila falleni и D.quinaria и грибной комар Allodia bipexa .

Источники и кредиты

  1. (c) Брайант Олсен, некоторые права защищены (CC BY-ND), загружено bryanto, EMETIC RUSSULA
  2. (c) Michael Gras, M.Ed., некоторые права защищены (CC BY), загружено Michael J. Gras, M.Ed., DSCN1294.JPG
  3. (c) Омар Корреа Родригес, некоторые права защищены (CC BY-NC), http: //conabio.inaturalist.org / photos / 2681511
  4. Адаптировано pmcauliffe из работы (c) Википедии, некоторые права защищены (CC BY-SA), http://en.wikipedia.org/wiki/Russula_emetica
  5. (c) Википедия, некоторые права защищены (CC BY-SA), http://en.wikipedia.org/wiki/Russula_emetica

Подробнее

границ | Селекция бактериального сообщества Russula griseocarnosa Mycosphere Soil

Введение

Почва – это динамическая биологическая матрица и важная часть наземной экосистемы.Почвенные микробы могут участвовать в важнейших процессах, таких как биогеохимические циклы, и играть роль в различных условиях окружающей среды (Cao et al., 2016). Почвенные бактерии играют важную роль в круговороте азота, например в азотфиксации (Lladó et al., 2017), что связано с богатством эктомикоризных грибов (Allison et al., 2007; Mediavilla et al., 2019). Почвенные бактерии, особенно бактерии-помощники микоризы (MHB), могут улучшить способность корней растений образовывать микоризу (Aspray et al., 2006), способствуют росту грибов на поверхности почвы или корня и вызывают прорастание грибов в почве (Frey-Klett et al., 2007, 2011). Бактерии могут выполнять множество симбиотических функций в грибах, включая ингибирование патогенов и антагонистов, улучшение распределения спор, обеспечение регуляторов роста и витаминов (Riedlinger et al., 2006) и увеличение производства грибов (Pent et al., 2017). Бактерии были обнаружены в гифах грибов, микоризе и плодовых телах грибов (Boer et al., 2005; Pent et al., 2017). Эти MHB служат в качестве биоудобрений, способствующих формированию плодовых тел и повышению их продуктивности (Young et al., 2013). Эктомикоризные грибы выделяют много гиф, которые способствуют поглощению воды и питательных веществ (Martin et al., 2007), а также могут использоваться в качестве переносчиков для переноса бактерий (Boer et al., 2005).

Russula griseocarnosa – дикие съедобные, лекарственные и эктомикоризные грибы-симбионты, широко распространенные на юге Китая (Yu et al., 2020). Плодовые тела R. griseocarnosa невозможно культивировать искусственно (Chen et al., 2010; Ming et al., 2014). R. griseocarnosa имеет высокую хозяйственную ценность; его мякоть имеет высокую питательную ценность (Chen et al., 2010; Ming et al., 2014). R. griseocarnosa , как было доказано, оказывает благотворное влияние на рассеивание или предотвращение сердечных заболеваний и смягчение мозговых вен (Chen et al., 2010) при использовании в качестве функциональной пищи (Chen et al., 2010). Полисахариды R. griseocarnosa обладают антиоксидантной активностью (Ming et al., 2014) и подавляют пролиферацию клеток рака шейки матки (Yuan et al., 2017; Liu et al., 2018). Исходя из местоположения и качества R. griseocarnosa , плодовые тела R. griseocarnosa можно продавать по цене 35–45 долларов США / кг, а сушеные тела R. griseocarnosa продаются по цене 140–180 долларов США / кг (Ming et al., 2014) с ростом цен. Гифы R. griseocarnosa плотно агрегированы с почвой вокруг эктомикоризных деревьев-хозяев, таких как Betula platyphylla , Castanopsis carlesii , Pinus massoniana и Psychotria asiatica .В симбиотических отношениях между грибами и деревьями-хозяевами гриб может поглощать основные элементы, особенно фосфор (Hall et al., 2003), чтобы способствовать росту деревьев, а деревья могут обеспечивать гриб углеводами (Giomaro et al., 2005). Формирование плодовых тел эктомикоризных грибов должно иметь симбиотические отношения с растениями при определенных условиях, и этот процесс трудно достичь искусственно для большинства съедобных эктомикоризных грибов (Hall et al., 2003; Giomaro et al., 2005), например, R. griseocarnosa . Есть свидетельства того, что несколько бактерий выбираются в микосфере эктомикоризной Laccaria Proxa (Warmink et al., 2009). Pseudomonas и Burkholderia являются основными бактериальными сообществами плодовых тел и почвенной среды Russula decolorans (Pent et al., 2017). Сообщества Pseudomonas значительно увеличены в микосфере L. проксима по сравнению с соответствующей насыпной почвой (Warmink et al., 2009). Дополнительные данные показывают, что бактерии могут запускать (Noble et al., 2009) или ингибировать (Munsch et al., 2002; Yun et al., 2013) образование плодовых тел грибов. На состав бактерий в плодовых телах могут прямо или косвенно влиять почвенные бактериальные сообщества (Antony-Babu et al., 2013), предполагая, что R. griseocarnosa также могут иметь бактерии-помощники для роста и поддержания мицелия в почве.

Физико-химические свойства почвы, наличие грибов и других факторов могут влиять на структуру сообщества микробных сообществ почвы (Гарбева и др., 2004). Singh et al. (2008) показали, что виды растений влияют на ризосферные грибы, но не на ризосферные бактерии. Сообщество почвенных микробов и связанные с ними параметры окружающей среды определяют структуру бактериального сообщества ризосферы больше, чем генотипы или виды растений (Bulgarelli et al., 2012; Vandenkoornhuyse et al., 2015). Почва содержит множество бактериальных сообществ, сформированных силами окружающей среды (Rousk et al., 2010). Эти силы окружающей среды могут косвенно влиять на структуру бактериальных сообществ в мицелии и плодовых телах грибов (Warmink et al., 2009; Pent et al., 2017). Воздействие бактерий на эктомикоризные грибы может варьироваться в зависимости от таких факторов почвы, как pH и доступность углерода (Brulé et al., 2001; Pent et al., 2017; Oh and Lim, 2018). Бактерии в окружающей почве фильтруются условиями, создаваемыми плодовыми телами, и некоторые бактерии все еще остаются в плодовых телах (Antony-Babu et al., 2013; Pent et al., 2017). MHB не являются специфичными для растений, но селективны в отношении видов грибов (Pivato et al., 2009). Такая селективность была обнаружена у грибов, которые отбирают сообщества почвенных бактерий на основе грибов (Halsey et al., 2016) и конкретных свойств почвы, таких как pH и содержание органического углерода (SOC) в почве (Pent et al., 2017). Неслучайный выбор может зависеть от их симбиотических функций или требований среды обитания (Pent et al., 2017). Такая селективность больше способствует развитию плодовых тел грибов. Формирование плодовых тел L. проксима может быть инициировано сообществами Pseudomonas (Warmink et al., 2009). Бактериальные метаболиты, питательные вещества или стимулы могут оказывать положительное или отрицательное влияние на рост грибов или прорастание спор (Oh and Lim, 2018).Leyval и Berthelin (1991) предположили, что бактерии могут растворять питательные вещества почвы и сотрудничать с эктомикоризными грибами, увеличивая распространение корней хозяина.

Мы стремились изучить характеристики почвенных бактерий, связанных с ростом R. griseocarnosa , путем сравнения разнообразия, структуры сообщества и функциональных профилей бактерий в микосфере и основной массе почвы. Мы использовали секвенирование Miseq, чтобы расширить объем исследований и повысить точность путем сравнения типов почв в разных географических точках.Кроме того, PICRUSt использовался для прогнозирования и сравнения функционального спектра бактерий в микосфере почвы R. griseocarnosa . Мы ожидаем, что это исследование не только поможет нам понять взаимодействие между R. griseocarnosa и почвенными бактериями, но также предоставит теоретическую основу для сохранения и размножения R. griseocarnosa .

Материалы и методы

Сбор проб

Было собрано 80 образцов почвы с 10 участков произрастания R. griseocarnosa .В течение июля 2017 г. участки роста были распределены в трех провинциях Китая в долготном диапазоне от 110 ° 38 ‘до 117 ° 35’ (Таблица 1). Окружающая среда каждого участка состоит из лесных угодий с различной и отчетливой растительностью (Таблица 1). Все регионы имеют диапазон высот от 38 до 708 м над уровнем моря и диапазон температур плодоносящего воздуха от 21 до 38 ° C. Диапазон географических расстояний от 6,50 до 763,48 км (дополнительная таблица S1).

Таблица 1. Информация о местонахождении, использованная в данном исследовании.

Географическое положение и вегетативные характеристики приведены в Таблице 1. На каждом участке пять плодовых тел R. griseocarnosa были выкопаны на глубине 10 см с помощью стерильного ручного шпателя; Затем микосферную почву переносили в стерильный полиэтиленовый пакет (Warmink and van Elsas, 2008; Oh et al., 2016). Образцы были собраны в зоне отсутствия плодовых тел с боковым расстоянием 40 см от R. griseocarnosa и будут здесь называться «насыпной почвой» (Warmink and van Elsas, 2008).Одну фракцию образцов замораживали с использованием жидкого азота и хранили при -70 ° C для экстракции ДНК. Оставшуюся фракцию сушили на воздухе и просеивали с размером ячеек 2 мм, а затем использовали для физико-химического анализа.

Высушенные на воздухе образцы использовали для определения pH почвы с использованием ячейки 2 мм с соотношением почвы и воды 1: 2,5 (вес / объем) (Wu et al., 2000). SOC измеряли окислением дихромата (Nelson and Sommers, 1996). Доступный фосфор (AP) измеряли с помощью антиспектрофотометрического раствора раствор гидрокарбоната натрия-Mo-Sb (Retamal-Salgado et al., 2017). Доступный в почве калий (АК) измерялся пламенной фотометрией (Zhao et al., 2014). Доступный азот (AN) определяли окислением персульфата калия (Liu et al., 2015).

Выделение ДНК и ПЦР-амплификация

ДНК почвы

экстрагировали из 0,30 г почвы с использованием набора Ezup Column Soil DNA kit (Sangon Biotech, Shanghai) в соответствии с инструкциями производителя (Griffiths et al., 2000). Образцы помещали в центрифужные пробирки объемом 1,5 мл с 500 мг стеклянных шариков. К образцам добавляли 400 мкл буфера SCL при 65 ° C с последующей инкубацией при 65 ° C на водяной бане в течение 5 минут.Затем образцы центрифугировали в течение 3 минут и собирали супернатант. К супернатанту добавляли равный объем буфера SP и инкубировали на льду в течение 10 мин. После инкубации добавляли 200 мкл β-меркаптоэтанола, и образцы дополнительно центрифугировали в течение 3 минут. Супернатант собирали и добавляли 1,5 объема буфера SB. Образцы дважды промывали 700 и 300 мкл промывочного раствора соответственно. Наконец, к центру адсорбционной мембраны добавляли 80 мкл буфера ТЕ, и раствор ДНК получали центрифугированием при 12000 об / мин в течение 3 минут.Концентрацию и чистоту ДНК измеряли на спектрофотометре NanoDrop 2000 (Thermo Scientific, Wilmington, DE, США).

Области V3-V4 бактериального 16S были амплифицированы праймерами 338F (5′-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3 ‘) и 806R (5′-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3’) (Mori et al., 2014). Реакции ПЦР проводили с использованием следующей программы: 95 ° C в течение 3 минут, затем 35 циклов 95 ° C в течение 30 секунд, 55 ° C в течение 30 секунд, 72 ° C в течение 45 секунд и конечное продление на 72 ° C. C в течение 10 мин в системе ПЦР с термоциклером GeneAmp 9700.Реакции ПЦР проводили следующим образом: 4 мкл 5 × буфера FastPfu, 2 мкл 2,5 мМ dNTP, 0,8 мкл каждого праймера (5 мкМ), 0,4 мкл полимеразы FastPfu, 0,2 мкл 2,0 г / л BSA, 2 мкл матрицы 50 мг / л. ДНК и 9,8 мкл ddH 2 O в общем объеме 20 мкл. Все продукты ПЦР собирали из 2% агарозных гелей и очищали с использованием набора для экстракции из гелей ДНК (Axygen Biosciences, Inc., США) и количественно определяли перед секвенированием.

Miseq-секвенирование

Очищенные продукты были собраны в равном объеме и секвенированы (2 × 300 п.н.) с использованием платформы Illumina Miseq в Majorbio Bio-Pharm Technology Co., Ltd., Шанхай, Китай. Необработанные чтения были депонированы в базу данных NCBI Sequence Read Archive (SRA) (номер доступа: PRJNA553654).

Биоинформатический анализ ампликонов 16SrRNA

Raw fastq были демультиплексированы, отфильтрованы по качеству и объединены с использованием следующих стандартов: (1) усекать чтения 300 бит / с, где средний показатель качества <20 по 50 бит; усеченные коды считывания менее 50 бит / с отбрасывались; (2) были включены последовательности точного совпадения штрих-кода и два несоответствия нуклеотида в сопоставлении праймеров или считывания, содержащие неоднозначные символы, были удалены; (3) собирать только перекрывающиеся последовательности, превышающие 10 п.н., согласно перекрывающимся последовательностям; и (4) разобранные показания были отброшены.

Оперативные таксономические единицы (OTU) были сгруппированы по граничному значению сходства 97%, а химерные последовательности были идентифицированы и удалены с помощью USEARCH (версия 7.0). Последовательность гена 16S рРНК анализировали с помощью базы данных SILVA (SSU123) с использованием порога достоверности 70% (Cole et al., 2013; Quast et al., 2013). Подвыборка была основана на минимальной последовательности выборки с одинаковой глубиной секвенирования (16175 последовательностей на каждую с последующей кластеризацией) (Ye et al., 2017). Метрики разнообразия, то есть богатство (наблюдаемые виды), индекс богатства Чао, индекс разнообразия Шеннона, а также охват и филогенетическое разнообразие были рассчитаны на основе таблиц OTU с использованием матери (v.1.30.1). Индексы описывают структуру бактериальных сообществ.

Статистический анализ

Статистический анализ проводился с использованием онлайн-платформы Majorbio I-Sanger Cloud Platform. Результаты двух групп данных соответствовали нормальному распределению, а дисперсия двух групп не была одинаковой. Таким образом, результаты были выражены в виде средних значений и двухгруппового статистического анализа с использованием теста Велча t (Delacre et al., 2017).Полоса индекса разнообразия представляет собой среднее значение ± стандартная ошибка. Значимые корреляции выражаются как: 0,01 < p ≤ 0,05; ∗∗ 0,001 < p ≤ 0,01; ∗∗∗ p ≤ 0,001.

LEfSe использовался для идентификации таксонов, которые постоянно различались с использованием параметров по умолчанию (LDA Score> 2, p <0,05). LEfSe применялся для идентификации микосферы и биомаркеров общей почвы микробиомов на уровне родов.Биомаркеры классифицировали по их статистической значимости. Результаты визуализировали с помощью гистограмм и кладограмм (Segata et al., 2011).

Mantel Tests (1967) с 999 перестановками были использованы QIIME для проверки корреляции Брея-Кертиса между свойствами почвы / участка и структурой бактериального сообщества (Caporaso et al., 2010). ANOSIM-анализ взаимосвязи сайтов был выполнен с использованием пакета R’s Vegan (версия 3.3.3) (Oksanen et al., 2017). Чтобы проанализировать взаимосвязь между таксонами и свойствами почвы / участка, был проведен анализ вариационного порционирования (VPA) с использованием пакета R’s Vegan (Oksanen et al., 2017). В анализе использовались OTU и свойства почвы / участка. Анализ соответствия без тренда (DCA) проводился на основе OTU. График анализа основных компонентов (PCA) был составлен с помощью пакета R’s Vegan (Oksanen et al., 2017).

Коэффициенты корреляции

Спирмена среди 30 основных бактериальных родов микосферы и свойств почвы были рассчитаны и отображены в виде тепловой карты с использованием пакета R’s pheatmap (Kolde, 2019). Корреляционный анализ свойств почвы Спирмена и индексы разнообразия были рассчитаны с помощью SPSS21.0.

Функциональные предсказания 16S рРНК

Микробная функция была предсказана PICRUSt (Langille et al., 2013; Oh et al., 2016). OTU были назначены с помощью команды QIIME «pick_closed_otus» с 97% сходством в базе данных Greengenes13.5. Затем предсказанные функции были перенесены в базу данных KEGG (Киотская энциклопедия генов и геномов), и статистические различия между группами сравнивались с помощью программного обеспечения STAMP (Parks and Beiko, 2010). t -тест Уэлча и показатель ложного обнаружения Стори (FDR, p <0.05) были выполнены для двух групп (Storey, 2007).

Результаты

Отбор проб микосферы и насыпной почвы на месте

Содержание органического углерода в почве в местах сбора колеблется от 12,88 до 139,07 г / кг (Таблица 1). PH почвы в местах сбора находился в пределах от 3,88 до 6,43. Содержание в почве доступного азота (AN, 102,12–643,08 мг / кг), доступного фосфора (AP, 1,67–80,04 мг / кг) и доступного калия (AK, 71,70–318,03 мг / кг) показало значительные изменения в местах сбора ( Таблица 1). Географическая удаленность колеблется от 6.От 50 до 763,48 км (дополнительная таблица S1).

Из всех участков, pH почвы YA ( p = 0,014) и ZP ( p = 0,001) был значительно выше в почве микосферы, в то время как pH почвы LJ ( p <0,001), JL ( p <0,001) и JJ ( p = 0,032) были значительно ниже в микосфере почвы. SOC LJ ( p = 0,016), HTC ( p = 0,022) и JL ( p = 0,010) было значительно выше в микосфере почвы, в то время как SOC YA ( p = 0.027) и ZP ( p = 0,001) было значительно ниже в микосфере почвы. AN LJ ( p = 0,041), DT ( p = 0,006), JL ( p = 0,018) и ZP ( p <0,001) было значительно выше в микосфере почвы. AP YA ( p = 0,004) и ZP ( p = 0,044) был значительно выше в микосфере почвы. AK JJ ( p = 0,020), YA ( p = 0,028) и ZP ( p <0,001) были значительно выше в почве микосферы.На большинстве участков с микоризовой почвой содержание АН, АК и АП было значительно выше, чем в насыпной почве. Результаты показали, что почвы микосферы были более богаты питательными веществами по сравнению с массивными почвами (дополнительная таблица S2).

Сообщества и структура бактерий в микосфере и насыпной почве

Разнообразие бактериального сообщества

Каждый образец содержал 16 175 бактериальных последовательностей для дальнейшего анализа (рис. 1). Всего было выделено 6014 OTU на уровне сходства 97%.Мы исследовали различие между микосферой и основной массой бактериальных сообществ с образцами из десяти разных мест. Индексы Чао и Шеннона образцов микосферы из JL, LJ и THL были значительно ниже, чем в насыпной почве (рис. 2). Индекс Chao участка HTC ( p = 0,010) и участка ZP ( p = 0,010) был значительно ниже, чем у насыпной почвы, в то время как индекс Шеннона не показал значительной разницы в насыпной почве. Только четыре участка не сообщили о значительных различиях между индексами Чао и Шеннона в отношении микосферы и насыпной почвы.Структура бактериального сообщества значительно сгруппировалась с почвенными компартментами в десяти участках (ANOSIM; бактерии: R = 0,74, p = 0,001).

Рис. 1. Кривые разрежения бактериальных ОТЕ.

Рис. 2. Сравнение индексов Чао (A) и Шеннона (B) между микосферой и насыпной почвой. Достоверные различия на * p <0,05; ** p <0,01 и *** p <0.001.

Краеугольные виды в микосфере и насыпных почвах

Всего было получено 6014 бактериальных OTU из десяти сайтов, сгруппированных в 38 типов. Proteobacteria , Acidobacteria , Actinobacteria и Chloroflexi были доминирующими типами, присутствующими в образцах почвы (Рисунок 3A), составляя 86,99 и 86,53% от общего количества видов в микосфере и объемных образцах почвы, соответственно (Рисунок 3B ). Типы Cyanobacteria , Saccharibacteria , Gemmatimonadetes и Nitrospirae также присутствовали во всех исследованных образцах, но с меньшим видовым богатством. Proteobacteria ( p = 0,023), Planctomycetes ( p = 0,012) и Verrucomicrobia ( p = 0,034) были значительно выше в микосфере почвы, в то время как Chloroflexi 0,00 p ( ), Firmicutes ( p = 0,040), Cyanobacteria ( p = 0,033), Saccharibacteria ( p = 0,002) и Gemmatimonadetes ( p = микосферная почва (рис. 3С).

Рисунок 3. Сравнение типов микосферы и насыпной почвы. (A) Обилие типов каждого участка. (B) Сравнение средней численности филума в микосфере и массивной почве. (C) Значительные различия в численности типов между микосферой и массивной почвой. Достоверные различия по * p <0,05 и ** p <0,01.

На уровне филума относительная численность Acidobacteria ( p = 0.022) и Planctomycetes ( p = 0,016) были значительно обогащены микосферной почвой YA, в то время как Actinobacteria ( p = 0,015), Saccharibacteria ( p = 0,013) и Gemmatites p = 0,030) были значительно выше в массивной почве YA (дополнительная таблица S3). Относительная численность Proteobacteria ( p = 0,004), Acidobacteria ( p = 0,005), Planctomycetes ( p = 0.030) и Verrucomicrobia ( p = 0,017) были значительно выше в почве микосферы FS, в то время как Chloroflexi ( p <0,001), Actinobacteria ( p = 0,011), Firmicutes p = 0,008) и Cyanobacteria ( p <0,001) были значительно выше в сыпучей почве FS (дополнительная таблица S3). На уровне филума относительная численность Acidobacteria ( p = 0.015) и Planctomycetes ( p = 0,019) были значительно выше в почве микосферы JL, в то время как Bacteroidetes ( p = 0,013), Saccharibacteria ( p = 0,022), p Gemmati <0,001) и Nitrospirae ( p = 0,012) были значительно ниже (дополнительная таблица S3). Относительная численность Proteobacteria ( p = 0,006) была значительно выше в почве микосферы LJ, в то время как Chloroflexi ( p <0.001), Cyanobacteria ( p = 0,017) и Bacteroidetes ( p = 0,018) были значительно выше в основной почве LJ (дополнительная таблица S3). Относительная численность Gemmatimonadetes ( p = 0,001) была значительно выше в валовой почве HTC (дополнительная таблица S3). Относительная численность Acidobacteria ( p = 0,046) была значительно выше в насыпной почве THL. Эти результаты показывают, что Proteobacteria , Acidobacteria , Planctomycetes и Verrucomicrobia были значительно выше в микосфере почвы, что согласуется с общим анализом (дополнительная таблица S3).

По данным секвенирования обнаружено более 700 родов. Относительная численность 92 родов бактерий превышала 1%. В топ-30 родов norank_f__DA111 ( p = 0,039), Burkholderia-Paraburkholderia ( p = 0,045), Mycobacterium ( p = 0,025), <0,001 p ( Roseiarcus (9011) Candidatus_Xiphinematobacter ( p = 0,032), Sorangium ( p = 0,019), Acidobacterium ( p = 0.020) и Singulisphaera ( p = 0,008) были значительно выше в образцах почвы микосферы (Рисунок 4 и дополнительная таблица S4), в то время как norank_c__JG37-AG-4 ( p = 0,015) и norank_f__Anaerolineaceae ( p p = 0,003) были значительно выше в насыпном грунте (рис. 4). Для всех родов микосфера и основные группы почв были представлены кладограммами, а оценка LDA, равная двум, была подтверждена с помощью LEfSe (рис. 5).

Рис. 4. Значительные различия между 30 первыми родами между микосферой и насыпной почвой.Достоверные различия на * p <0,05; ** p <0,01 и *** p <0,001.

Рис. 5. Оценки LDA показали все существенные родовые различия между микосферой и насыпной почвой.

Абиотические и биотические факторы в
R. griseocarnosa Микосфера и насыпные почвы

pH почвы, SOC, AN, AP и AK вызывают наибольшую изменчивость структур бактериальных сообществ как для микосферы, так и для основной массы почвы, как продемонстрировал тест Mantel (Таблица 2).Для количественной оценки влияния свойств почвы и высоты на бактериальные сообщества микосферы был проведен дисперсионный анализ (VPA). Матрица взаимосвязи свойств почвы с бактериальным сообществом почвы была построена с использованием анализа RDA.

Таблица 2. Тест Мантеля на свойства почвы.

Корреляционный анализ показал, что существует значительная корреляция между параметрами почвы и структурой почвенного бактериального сообщества.Эти переменные объясняют изменения в структуре бактериального сообщества в микосфере (24,30%) и основной массе почвы (39,69%) (Рисунок 6). Параметры почвы составляли 20,56%, высота составляла 3,71%, а взаимодействие между параметрами почвы и высотой объясняло 0,03% изменений в бактериальных сообществах микосферы (Рисунок 6A). Между тем, для насыпной почвы параметры почвы объясняли 33,86%, высота объясняла 5,68%, а взаимодействие между параметрами почвы и высотой объясняло 0.15% вариаций в бактериальных сообществах (рис. 6В). PH почвы и AN были определены как основные факторы, влияющие на параметр почвы, и объяснили разнообразие бактериальных сообществ в микосфере на уровне 3,87 и 4,37% соответственно (Рисунок 6).

Рис. 6. Анализ вариационного распределения (VPA) свойств почвы / участка в бактериальном сообществе. (A) Микосферная почва. (В) Насыпной грунт.

Чтобы изучить влияние растений-хозяев на почвенные бактерии, мы проанализировали микосферные бактериальные сообщества R.griseocarnosa под разными растениями-хозяевами по PCA. Первые две оси PCA объяснили 20,96 и 13,24% дисперсии данных OTU, соответственно. PCA показал, что образцы были разбросаны по разным растениям-хозяевам (рис. 7). Это указывает на то, что растение-хозяин мало влияло на бактерии почвенной микосферы. Не было значительных различий в индексе бактериального разнообразия среди пяти повторов в каждом квадрате (данные не показаны), что указывает на то, что индивидуум растения-хозяина оказывает минимальное влияние на бактериальное разнообразие.

Рис. 7. График анализа основных компонентов (PCA) богатства почвенных бактериальных сообществ и растений-хозяев. Значения PC1 и PC2, объясняющие 20,96 и 13,24% дисперсии.

Факторы окружающей среды влияют на сообщества почвенных бактерий микосферы

Индекс разнообразия достоверно коррелировал с характеристиками почвы и участка (Таблица 3). OTU и филогенетическое разнообразие имели положительную корреляцию с высотой геологического местоположения, SOC и AN (Таблица 3).Индекс Шеннона достоверно и положительно коррелировал с SOC ( p = 0,012) и AN ( p = 0,006), тогда как отрицательно коррелировал с pH ( p = 0,012) (Таблица 3). На участках сбора микосферы была кислая почва со значениями pH в диапазоне от 3,99 до 4,55.

Таблица 3. Корреляционная матрица Спирмена между свойствами почвы / участка и индексами разнообразия.

Относительная численность 30 лучших родов и свойства почвы / участка были изучены с помощью корреляционного анализа Спирмена (рис. 8).Тепловая карта показала, что AP и AK сгруппированы вместе, а высота, SOC и AN сгруппированы вместе, в то время как pH был дальше друг от друга по порядку (рис. 8). Variibacter показал значительную положительную корреляцию с pH ( p <0,001) и значительную отрицательную корреляцию с высотой ( p = 0,002), SOC ( p = 0,029) и AN ( p = 0,003). . Acidibacter показал отрицательную корреляцию с высотой ( p <0.001) и AN ( p = 0,021). Burkholderia-Paraburkholderia показала значительную положительную корреляцию с pH ( p = 0,005) и значительную отрицательную корреляцию с SOC ( p = 0,018). Candidatus_Xiphinematobacter показал отрицательную корреляцию с AP ( p = 0,005), SOC ( p = 0,004) и AN ( p = 0,021). Acidothermus показал значительную положительную корреляцию с AP ( p <0.001), AK ( p = 0,015), SOC ( p <0,001) и AN ( p = 0,002) и значимая отрицательная корреляция с pH ( p = 0,042). Rhizomicrobium показал положительную корреляцию с AP ( p <0,001), AK ( p <0,001) и AN ( p = 0,010). Roseiarcus показал положительную корреляцию с AP ( p = 0,001) и AK ( p = 0,049). Candidatus_Koribacter показал значительную положительную корреляцию с AP ( p = 0.043). Bradyrhizobium показал значительную положительную корреляцию с pH ( p = 0,0093). Singulisphaera показала значительную отрицательную корреляцию с pH ( p = 0,017) (Рисунок 8).

Рис. 8. Корреляция Спирмена для 30 лучших родов и свойств почвы / участка. Достоверные различия на * p <0,05; ** p <0,01 и *** p <0,001.

Функциональные прогнозы в микосфере и насыпном грунте

Используя Киотскую энциклопедию генов и геномов, пути ортологов (Oh et al., 2016), на KEGG-функции идентифицированных бактерий было определено значительное ( p <0,05) влияние микосферы и основной массы почвы (Рисунок 9). Результаты показали, что некоторые функциональные характеристики, такие как двухкомпонентная система, бактериальный хемотаксис, система бактериальной секреции, метаболизм тирозина, биосинтез ненасыщенных жирных кислот, метаболизм аскорбата и альдарата, а также метаболизм кофакторов и витаминов, были значительно увеличены в почве микосферы ( р <0.05) (Рисунок 9). По сравнению с массой почвы, биосинтез валина, лейцина и изолейцина, биогенез рибосом, гомологичная рекомбинация, гликолиз / глюконеогенез и биосинтез лизина были значительно ( p <0,05) ниже в микосфере почвы (Рисунок 9).

Рис. 9. Сравнение Киотской энциклопедии генов и функций геномов между микосферой и массивной почвой.

Обсуждение

Ключевые виды и экологические функции

Значительная часть (~ 96%) покрывающих последовательностей аннотирована для бактериальных членов (рис. 1), что указывает на то, что секвенирование может быть использовано для анализа изменений структуры бактериального сообщества в образцах почвы.В соответствии с большинством более ранних исследований грибов (Gryndler et al., 2000; Warmink and van Elsas, 2008; Oh et al., 2016) мы обнаружили, что для большинства участков бактериальное разнообразие в почве микосферы было значительно ниже, чем это насыпной грунт. Как видно из микосферы почвы R. griseocarnosa (рис. 2), низкое бактериальное разнообразие может быть общей чертой среды, в которой доминирует мицелий (Gryndler et al., 2000). По сравнению с основной почвой, бактериальное разнообразие микосферы Laccaria было значительным ( p <0.05), сниженная при анализе на агар R2A (Warmink and van Elsas, 2008). Бактериальное разнообразие доминирующей почвы Tricholoma matsutake было значительно ( p <0,05) ниже, чем T. matsutake второстепенной почвы (Oh et al., 2016). Olsson et al. (1996) продемонстрировали, что эктомикоризные гифы снижают активность бактерий в почве. Следовательно, это предполагает, что вариация бактериального разнообразия может отражать изменение популяции R. griseocarnosa .

Proteobacteria , Acidobacteria , Actinobacteria и Chloroflexi были доминирующими бактериальными сообществами в почве (рис. 3) с общей относительной численностью выше 86%. Proteobacteria , Planctomycetes и Verrucomicrobia были значительно выше в микосфере, в то время как Chloroflexi , Firmicutes , Cyanobacteria , Saccharibacteria и Gemonati были значительно ниже, а Gemonati и Gemonati. В некоторых образцах почвы содержание Acidobacteria в почве микосферы было значительно ( p <0,05) выше, чем в массивной почве (дополнительная таблица S3).

Proteobacteria естественным образом распространены в почвенной среде; таким образом, повышенное богатство микосферы почвы может быть результатом положительного эффекта R. griseocarnosa из-за его высокой скорости роста и способности использовать основной углеродный субстрат корней (Lauber et al., 2009). Proteobacteria Увеличение богатства может быть вызвано более высоким питательным статусом почвы в микосфере (Torsvik and Øvreås, 2002). Более того, преобладание Proteobacteria в гифах (Cho et al., 2003), плодовые тела (Barbieri et al., 2010; Pent et al., 2017) и микоризные корни (Poole et al., 2001; Frey-Klett et al., 2007) могут быть результатом повышенного содержания углерода. содержание этих грибковых почв. Burke et al. (2006) описали Acidobacterium как MHB. Исследования показали, что эти Proteobacteria и Acidobacteria физиологически и экологически близки, и обе предпочитают аналогичные экологические ниши в почве ризосферы (Singh et al., 2007; Kielak et al., 2016). Planctomycetes и Verrucomicrobia были значительно выше в почве ризосферы растений (Stafford et al., 2005; Zul et al., 2007; Nunes da Rocha et al., 2009), и они, по-видимому, функционально обладают сильной ризосферной емкостью, но их роль в ризосферном процессе еще предстоит доказать.

Бактериальные сообщества демонстрировали отчетливые структуры в микосфере и массивных почвах (Рисунок 4 и дополнительная таблица S4). Burkholderia-Paraburkholderia , Mycobacterium , Roseiarcus , Candidatus_Xiphinematobacter , Sorangium , Acidobacterium и Acidobacterium и Singulisphaera в образцах почвы в больших количествах были больше, чем в образцах почвы (в образцах почвы было больше 9011 Singulisphaera. ). Proteobacteria родов Bradyrhizobium , Burkholderia-Paraburkholderia и Roseiarcus обнаружены в бактериальных сообществах, ассоциированных с грибами (Pent et al., 2017). Например, известно, что Burkholderia (Nguyen and Bruns, 2015) является вспомогательной бактерией микоризы, которая способствует росту и колонизации микоризы. Kataoka et al. (2008) показали, что Burkholderia spp. и Bradyrhizobium spp. из эктомикоризных коротких корней с русулой и Suillus . Burkholderia spp. хорошо известны как азотфиксирующие бактерии (Timonen and Hurek, 2006). В последние годы многие Burkholderia были реклассифицированы как Paraburkholderia или Caballeronia (Sawana et al., 2014). Например, Burkholderia phenazinium и Burkholderia sordidicola были перемещены в род Paraburkholderia (Sawana et al., 2014), которые обнаружены в микоризосфере Pinus muricata (Nguyen, 2015) и Bruns.Имеются данные о том, что Burkholderia преимущественно ассоциирует с микоризой и что ее штаммы могут распространяться на верхушку корня (Poole et al., 2001). Члены рода Burkholderia встречаются одновременно с таксонами грибов (Stopnisek et al., 2015), и это совместное появление может быть связано со способностью Burkholderia мигрировать вместе с растущими гифами (Nazir et al., 2012 ). Mycobacterium обладает функцией азотфиксации (Rilling et al., 2018) и может обеспечивать азот для роста R.Гризеокарноса . Sorangium содержит богатые ферменты, расщепляющие ксилан, которые могут разрушать биологические макромолекулы, целлюлозу, гемицеллюлозу и ксилан (Tamaru et al., 2010), что способствует повышению урожайности грибов (Zhou et al., 2017). Singulisphaera , как ацидофильный гриб, также встречается в ризосферной почве Boletus edulis (Mediavilla et al., 2019). Acidobacterium был значительно выше в почве ризосферы растений (Oh et al., 2012; Yang et al., 2012), но их роль в ризосферном процессе еще предстоит доказать. Указано, что Burkholderia-Paraburkholderia , Mycobacterium , Roseiarcus , Acidobacterium , Sorangium и Singulisphaera были MHB R. griseocarnosa. Хотя функции Candidatus Xiphinematobacter неизвестны, возможно, что Candidatus Xiphinematobacter может быть MHB R. griseocarnosa .Эти бактерии могут играть важную роль в росте R. griseocarnosa .

Детерминанты бактериальных сообществ в почве

Среда роста мицелия (эктомикоризная и микосфера) влияет как на биологические, так и на абиотические факторы почвенной экосистемы (Boersma et al., 2010; Kluber et al., 2010; Trappe et al., 2012). Благодаря изучению грибов и бактерий в микосфере почвы T. matsutake , результаты показали, что микробное разнообразие, структура сообщества и функции бактерий в разных географических точках были схожими (Oh et al., 2016). Разнообразие и структура сообщества микосферных почвенных бактерий Agaricus sinodeliciosus были разными в разных регионах, но все они содержали несколько основных таксонов (Zhou et al., 2017). R. griseocarnosa может сосуществовать с видами деревьев-хозяев, таких как Betulaceae , Fagaceae , Pinaceae и Tiliaceae , с образованием эктомикоризы (Yu et al., 2020), но механизм симбиоза все еще неясен. (Yu et al., 2020), поэтому мы в основном изучали взаимосвязь между R.griseocarnosa и почвенные бактерии. Появляется все больше свидетельств того, что корневые выделения регулируют отношения между грибами и почвенными микроорганизмами (Poole et al., 2001; Oh et al., 2016; Pent et al., 2017).

Russula griseocarnosa микосфера имеет высокое содержание АН в почве микосферы (Таблица 1). Повышенное снабжение азотом может стимулировать производство большего количества спор и заселение корней проростков дуба Russula (Avis et al., 2003). PH почвы и AN были значительно выше, чем у большинства образцов почвы микосферы (дополнительная таблица S2).Сделан вывод, что основными факторами воздействия роста R. griseocarnosa были pH и AN; кроме того, предыдущие исследования показали, что pH существенно влияет на разнообразие бактериального сообщества почвы (Fierer and Jackson, 2006; Rousk et al., 2010; Pent et al., 2017). Singh et al. (2008) обнаружили, что на микоризосферу грибов и бактериальный комплекс влияет pH почвы. Здесь в выбранных местах исследования была кислая почва со значениями pH от 3,99 до 4,55. Предыдущие исследования показали, что изменения в структуре микробного сообщества почвы были тесно связаны с химическим составом почвы (Cao et al., 2016). Некоторые характеристики почвы (например, доступность питательных веществ и органический углерод) прямо или косвенно связаны с pH почвы, что может способствовать изменениям в структуре бактериального сообщества (Rousk et al., 2010). Исследования показали, что более высокие (Singh et al., 2014) и средние (Meng et al., 2012; Siles and Margesin, 2016) подъемы увеличивают бактериальное разнообразие, что согласуется с нашими выводами о том, что средние высоты увеличивают бактериальное разнообразие. Растения-хозяева и отдельные растения в меньшей степени влияют на разнообразие почвенных ризосферных бактерий, что согласуется с результатами предыдущего исследования (Pivato et al., 2009).

Бактериальная функция

Наше исследование проанализировало, создают ли бактериальные сообщества микосферы и валовых почв различные функциональные профили, таким образом связывая R. griseocarnosa с конкретными функциями бактериальной почвы. Наши результаты показали, что микосферы и насыпные почвы функционально различны. Почвы микосферы имели усиление двухкомпонентной системы, бактериального хемотаксиса, бактериальной секреторной системы, метаболизма тирозина, биосинтеза ненасыщенных жирных кислот, метаболизма аскорбата и альдарата, метаболизма кофакторов и витаминов ( p <0.05) (Рисунок 9). Pseudomonas может способствовать росту Agaricus bisporus , а соединения аутофагии, секретируемые A. bisporus , могут разлагаться Pseudomonas (Chen et al., 2013). Экссудаты корней содержат углеводы, аминокислоты, жирные кислоты и витамины, служат субстратом для микроорганизмов микосферы и являются важным источником углерода для почвенных микробов, тем самым способствуя обогащению микробного сообщества почвы (Bais et al., 2006; Michielse et al., 2012). Увеличение пищевого метаболизма указывает на то, что эти бактерии предпочитают микосферную почву R. griseocarnosa , потому что она легче усваивает питательные вещества (Oh et al., 2016). Хотя существуют ограничения в интерпретации функциональных прогнозов, мы определили функции, которые могут иметь потенциально положительное влияние на R. griseocarnosa . В будущих исследованиях можно будет рассмотреть эти функции для выяснения динамики среди микроорганизмов в микосфере почвы R. griseocarnosa .

Основные функциональные гены в микосфере не ограничиваются конкретным таксоном (Yan et al., 2017). Относительное количество некоторых функциональных генов в микосфере было выше, чем в массивной почве, что указывает на то, что эти функциональные признаки были выбраны микосферой. Хотя механизмы функционального отбора и его последствия в микосфере неясны, наше исследование предоставляет ценную информацию для лучшего понимания чрезмерно сложного процесса сочетаний микробных сообществ в микосфере почвы.

Заключение

В заключение мы определили подходящую среду для роста R. griseocarnosa путем сравнения физико-химических свойств, бактериального разнообразия и структуры сообществ микосферы и насыпных почв. Секвенирование 16S рРНК показало, что состав бактериального сообщества в микосфере существенно отличался от такового в насыпных почвах. Дальнейший анализ показал, что рост R. griseocarnosa вызвал изменение структуры микробного сообщества.Рост R. griseocarnosa снижает разнообразие и численность почвенных бактериальных сообществ. Среди переменных параметров почвы высота и pH оказали существенное влияние на структуру бактериального сообщества и свойства разнообразия во всех исследуемых географических точках. PH почвы и AN были основными факторами, способствовавшими росту R. griseocarnosa . Мы идентифицировали несколько доминирующих родов бактерий, в том числе Mycobacterium , Roseiarcus , Candidatus_Xiphinematobacter , Sorangium , Acidobacterium и Singulisphaera R., которые могут улучшать микосферу R.griseocarnosa рост. В ходе функционального анализа мы идентифицировали функциональные модули, связанные с метаболизмом питательных веществ бактерий в микосфере почвы R. griseocarnosa . Почва микосферы представляет собой сложную среду, и наше исследование показывает, что множественные симбиотические отношения между микробами и R. griseocarnosa могут снизить бактериальное разнообразие. Более того, это предполагает, что формирование плодовых тел R. griseocarnosa может зависеть не только от растений-хозяев, но и от бактериального сообщества в почве микосферы.Следовательно, применение мер управления для улучшения свойств почвы, включая использование азотных удобрений и микробных удобрений, содержащих MHB, может способствовать сохранению, размножению и устойчивому использованию R. griseocarnosa .

Заявление о доступности данных

Необработанные считанные данные секвенирования Illumina были депонированы в NCBI BioProject: PRJNA553654 в GenBank. Номер необработанных считываний SRA – SUB55.

Авторские взносы

FY, J-FL и JS участвовали в разработке исследования, сборе образцов и статистическом анализе.J-KL и S-KW проводили эксперименты по молекулярной биологии. FY подготовил рукопись. J-FL улучшил рукопись.

Финансирование

Это исследование было поддержано Исследовательским фондом Национального некоммерческого института CAF (CAFYBB2017ZB001), Национальным фондом естественных наук Китая (№№ 31770657 и 31570544) и Научно-технологическим проектом провинции Гуандун (2017B020205002).

Конфликт интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могут быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Дополнительные материалы

Дополнительные материалы к этой статье можно найти в Интернете по адресу: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fmicb.2020.00347/full#supplementary-material

Сноски

Список литературы

Эллисон, С. Д., Хэнсон, К. А., Треседер, К. К. (2007). Азотные удобрения сокращают разнообразие и изменяют структуру сообщества активных грибов в бореальных экосистемах. Soil Biol. Biochem. 39, 1878–1887.DOI: 10.1016 / j.soilbio.2007.02.001 DOI: 10.1016 / j.soilbio.2007.02.001

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Энтони-Бабу, С., Дево, А., Ван Ностранд, Дж. Д., Чжоу, Дж., Ле Такон, Ф., Робин, К. и др. (2013). Связанные с черным трюфелем бактериальные сообщества во время развития и созревания Tuber melanosporum ascocarps и предполагаемые функциональные роли. Environ. Microbiol. 16, 2831–2847. DOI: 10.1111 / 1462-2920.12294

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Аспрей, Т.Дж., Фрей-Клетт, П., Джонс, Дж. Э., Уиппс, Дж. М., Гарбай, Дж. И Бендинг, Г. Д. (2006). Бактерии-помощники микоризации: случай специфичности изменения архитектуры эктомикоризы, но не образования эктомикоризы. Микориза 16, 533–541. DOI: 10.1007 / s00572-006-0068-3

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Авис, П. Г., Маклафлин, Д. Дж., Дентингер, Б. К., и Райх, П. Б. (2003). Долгосрочное увеличение поступления азота изменяет надземные и подземные эктомикоризные сообщества и увеличивает доминирование Russula spp.в умеренной дубовой саванне. New Phytol. 160, 239–253. DOI: 10.1046 / j.1469-8137.2003.00865.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Байс, Х. П., Вейр, Т. Л., Перри, Л. Г., Гилрой, С., и Виванко, Дж. М. (2006). Роль корневых экссудатов во взаимодействии ризосферы с растениями и другими организмами. Annu. Rev. Plant Biol. 57, 233–266. DOI: 10.1146 / annurev.arplant.57.032905.105159

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Барбьери, Э., Ceccaroli, P., Saltarelli, R., Guidi, C., Potenza, L., Basaglia, M., et al. (2010). Новые данные об азотфиксации в итальянском белом трюфеле Tuber magnatum. Fungal Biol. 114, 936–942. DOI: 10.1016 / j.funbio.2010.09.001

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Бур В., де, Фолман, Л. Б., Саммербелл, Р. К., и Бодди, Л. (2005). Жизнь в мире грибов: влияние грибов на развитие почвенной бактериальной ниши. FEMS Microbiol. Ред. 29, 795–811. DOI: 10.1016 / j.femsre.2004.11.005

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Боерсма, Ф. Г. Х., Оттен, Р., Варминк, Дж. А., Назир, Р., и ван Эльзас, Дж. Д. (2010). Выбор бактерий, подобных Variovorax paradoxus, в микосфере и роль выделяемых грибами соединений. Soil Biol. Biochem. 42, 2137–2145. DOI: 10.1016 / j.soilbio.2010.08.009

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Брюле, К., Фрей-Клетт, П., Pierrat, J.C., Courrier, S., Gérard, F., Lemoine, M.C., et al. (2001). Выживание в почве эктомикоризного гриба Laccaria bicolor и эффекты помощника микоризы Pseudomonas fluorescens. Soil Biol. Biochem. 33, 1683–1694. DOI: 10.1016 / s0038-0717 (01) 00090-6

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Bulgarelli, D., Rott, M., Schlaeppi, K., Ver Loren van Themaat, E., Ahmadinejad, N., Assenza, F., et al. (2012).Выявление структуры и признаков сборки для Arabidopsis корнеобитающей бактериальной микробиоты. Nature 488, 91–95. DOI: 10.1038 / природа11336

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Берк, Д. Дж., Крецер, А. М., Ригевич, П. Т., и Топа, М. А. (2006). Бактериальное разнообразие почвы на плантациях сосны лоблоловой: влияние эктомикоризы и удобрения. FEMS Microbiol. Ecol. 57, 409–419. DOI: 10.1111 / j.1574-6941.2006.00125.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Цао, Х., Чен, Р., Ван, Л., Цзян, Л., Ян, Ф., Чжэн, С. и др. (2016). PH почвы, общий фосфор, климат и расстояние являются основными факторами, влияющими на микробную активность в региональном пространственном масштабе. Sci. Отчет 6: 25815. DOI: 10.1038 / srep25815

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Капорасо, Дж. Г., Кучински, Дж., Стомбо, Дж., Биттингер, К., Бушман, Ф.Д., Костелло, Э. К. и др. (2010). QIIME позволяет анализировать данные секвенирования сообщества с высокой пропускной способностью. Nat. Методы 7, 335–336. DOI: 10.1038 / nmeth.f.303

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Chen, S., Qiu, C., Huang, T., Zhou, W., Qi, Y., Gao, Y., et al. (2013). Влияние бактерий, продуцирующих дезаминазу 1-аминоциклопропан-1-карбоновой кислоты, на рост гиф и инициацию зачатков Agaricus bisporus. Fungal Ecol. 6, 110–118.DOI: 10.1016 / j.funeco.2012.08.003

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Чен, X. Х., Ся, Л. X., Чжоу, Х. Б., и Цю, Г. З. (2010). Химический состав и антиоксидантная активность Russula griseocarnosa sp. ноя . J. Agric. Food Chem. 58, 6966–6971. DOI: 10.1021 / jf1011775

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Чо, Ю.С., Ким, Дж. С., Кроули, Д. Э., и Чо, Б. Г. (2003). Стимуляция роста съедобного гриба Pleurotus ostreatus флуоресцентными псевдомонадами. FEMS Microbiol. Lett. 218, 271–276. DOI: 10.1016 / s0378-1097 (02) 01144-8

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Коул, Дж. Р., Ван, К., Фиш, Дж. А., Чай, Б., МакГаррел, Д. М., Сан, Ю. и др. (2013). Проект базы данных рибосом: данные и инструменты для высокопроизводительного анализа рРНК. Nucleic Acids Res. 42, D633 – D642. DOI: 10.1093 / nar / gkt1244

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Делакр, М., Лакенс Д. и Лейс К. (2017). Почему психологи по умолчанию должны использовать t-критерий Велча вместо t-критерия Стьюдента. Внутр. Rev. Soc. Psychol. 30, 92–101. DOI: 10.5334 / irsp.82

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Фрей-Клетт, П., Бурлинсон, П., Дево, А., Баррет, М., Таркка, М., и Сарнигуэ, А. (2011). Бактериально-грибковые взаимодействия: дефисы между сельскохозяйственными, клиническими, экологическими и пищевыми микробиологами. Microbiol. Мол. Биол. Ред. 75, 583–609.DOI: 10.1128 / mmbr.00020-11

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Гарбева П., ван Вин Дж. А. и ван Эльзас Дж. Д. (2004). Разнообразие микробов в почве: выбор микробных популяций по растениям и типу почвы и последствиям для подавления болезней. Annu. Rev. Phytopathol. 42, 243–270. DOI: 10.1146 / annurev.phyto.42.012604.135455

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Джомаро, Г. М., Систи, Д., и Замбонелли, А. (2005). «Культивирование съедобных эктомикоризных грибов с помощью микоризного синтеза in vitro», в Vitro Culture of Mycorrhizas. Биология почвы , Vol. 4, ред. С. Деклерк, Дж. А. Фортин и Д. Г. Струллу (Берлин: Springer), 253–267. DOI: 10.1007 / 3-540-27331-x_14

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Гриффитс, Р. И., Уайтли, А. С., О’Доннелл, А. Г., и Бейли, М. Дж. (2000). Экспресс-метод соэкстракции ДНК и РНК из природных сред для анализа состава микробного сообщества на основе рибосомных ДНК и рРНК. Заявл. Environ. Microb. 66, 5488–5491. DOI: 10.1128 / aem.66.12.5488-5491.2000

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Gryndler, M., Hrselova, H., and Striteska, D. (2000). Влияние почвенных бактерий на рост гиф арбускулярного микоризного гриба glomus Claroideum. Folia Microbiol. 45, 545–551. DOI: 10.1007 / bf02818724

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Холл, И. Р., Юн, В., и Амикуччи, А.(2003). Выращивание съедобных эктомикоризных грибов. Trends Biotechnol. 21, 433–438. DOI: 10.1016 / s0167-7799 (03) 00204-x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Холзи, Дж. А., де Касия Перейра и Силва, М., Андреоте, Ф. Д. (2016). Селекция бактерий микосферами грибов тропических лесов Атлантического океана. Антон. Леу. 109, 1353–1365. DOI: 10.1007 / s10482-016-0734-1

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Катаока, Р., Танигучи, Т., Оошима, Х., и Футаи, К. (2008). Сравнение бактериальных сообществ, установленных на микоризах, сформированных на кончиках корней Pinus thunbergii восемью видами грибов. Почва растений. 304, 267–275. DOI: 10.1007 / s11104-008-9548-x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Киелак, А. М., Баррето, К. К., Ковальчук, Г. А., ван Вин, Дж. А., и Курамаэ, Э. Э. (2016). Экология ацидобактерий: выход за рамки генов и геномов. Фронт.Microbiol. 7: 744. DOI: 10.3389 / fmicb.2016.00744

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Клубер Л. А., Тиннесанд К. М., Колдуэлл Б. А., Данхэм С. М., Ярвуд Р. Р., Боттомли П. Дж. И др. (2010). Эктомикоризные маты изменяют биогеохимию лесных почв. Soil Biol. Biochem. 42, 1607–1613. DOI: 10.1016 / j.soilbio.2010.06.001

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Кольде, Р. (2019). Pheatmap: красивые тепловые карты.Пакет R версии 1.0.12.

Google Scholar

Лангиль, М. Г. И., Заневельд, Дж., Капорасо, Дж. Дж., Макдональд, Д., Найтс, Д., Рейес, Дж. А. и др. (2013). Прогнозирующее функциональное профилирование микробных сообществ с использованием последовательностей маркерного гена 16S рРНК. Nat. Biotechnol. 31, 814–821. DOI: 10.1038 / NBT.2676

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Лаубер, К. Л., Хамади, М., Найт, Р., и Фирер, Н. (2009). Оценка pH почвы на основе пиросеквенирования как предиктор структуры почвенного бактериального сообщества в континентальном масштабе. Заявл. Environ. Microbiol. 75, 5111–5120. DOI: 10.1128 / aem.00335-09

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Leyval, C., и Berthelin, J. (1991). Выветривание слюды корнями и ризосферными микроорганизмами сосны. Почвоведение. Soc. Являюсь. J. 55: 1009. DOI: 10.2136 / sssaj1991.03615995005500040020x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Лю П., Ван, Х. Х., Ли, Дж. Г., Цинь, В., Сяо, К. З., Чжао, Х. и др.(2015). Пиросеквенирование позволяет выявить грибковые сообщества в ризосфере Синьцзянского мармелада. Biomed Res. Int. 2015, 1–8. DOI: 10.1155 / 2015/972481

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Лю Ю., Чжан Дж. И Мэн З. (2018). Очистка, характеристика и противоопухолевые активности полисахаридов, экстрагированных из дикой природы (Russula griseocarnosa) . Внутр. J. Biol. Макромол. 109, 1054–1060. DOI: 10.1016 / j.ijbiomac.2017.11.093

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Лядо, С., Лопес-Мондехар, Р., и Бальдриан, П. (2017). Бактерии лесных почв: разнообразие, участие в экосистемных процессах и реакция на глобальные изменения. Microbiol. Мол. Биол. Ред. 81, e63 – e16. DOI: 10.1128 / ммр. 00063-16

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Mantel Tests (1967). Обнаружение кластеризации болезней и обобщенный регрессионный подход. Cancer Res. 27, 209–220.

Google Scholar

Мартин Ф., Колер А. и Дюплесси С. (2007). Жизнь в гармонии в лесу под землей: эктомикоризная геномика. Curr. Opin. Plant Biol. 10, 204–210. DOI: 10.1016 / j.pbi.2007.01.006

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Медиавилла, О., Гемл, Дж., Олайсола, Дж., Ория-де-Руэда, Дж. А., Балдриан, П., и Мартин-Пинто, П. (2019). Влияние мер по предотвращению лесных пожаров на бактериальные сообщества, связанные с продуктивными участками Boletus edulis. Microb. Biotechnol. 12, 1188–1198. DOI: 10.1111 / 1751-7915.13395

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Meng, H., Li, K., Nie, M., Wan, J. R., Quan, Z. X., Fang, C.M., et al. (2012). Ответы бактериальных и грибных сообществ на градиент высот в субтропических горных лесах Китая. Заявл. Microbiol. Биот. 97, 2219–2230. DOI: 10.1007 / s00253-012-4063-7

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Michielse, C.Б., Рейнен, Л., Оливейн, К., Алабуветт, К., и Реп, М. (2012). Разложение ароматических соединений через β-кетоадипатный путь необходимо для патогенности возбудителя увядания томатов Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici . Mol. Завод Патол. 13, 1089–1100. DOI: 10.1111 / j.1364-3703.2012.00818.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Мин, Т., Ли, Дж., Хо, П., Вэй, Ю. и Чен, X. (2014). Анализ свободных аминокислот сыроежки griseocarnosa, собранных на разных стадиях созревания, с использованием iTRAQ ® -LC-MS / MS. Food Anal. Методы 7, 1816–1823. DOI: 10.1007 / s12161-014-9817-7

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Мори, Х., Маруяма, Ф., Като, Х., Тойода, А., Дозоно, А., Оцубо, Ю. и др. (2014). Разработка и экспериментальное применение нового невырожденного универсального набора праймеров, который амплифицирует прокариотические гены 16S рРНК с низкой вероятностью амплификации генов эукариотической рРНК. DNA Res. 21, 217–227. DOI: 10.1093 / dnares / dst052

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Мюнш, П., Мейер, Дж. М., Марттинен, Н., Гардан, Л., Кристен, Р., Алатосава, Т. (2002). Pseudomonas costantinii sp. nov., еще один возбудитель болезни коричневой пятнистости, выделенный из культивируемых спорофоров грибов в Финляндии. Внутр. J. Syst. Evol. Microbiol. 52, 1973–1983. DOI: 10.1099 / 00207713-52-6-1973

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Назир Р., Хансен М. А., Соренсен С. и ван Эльзас Дж. Д. (2012). Проект последовательности генома почвенной бактерии Burkholderia terrae штамма BS001, которая взаимодействует с поверхностными структурами грибов. J. Bacteriol. 194, 4480–4481. DOI: 10.1128 / jb.00725-12

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Нельсон Д. У. и Соммерс Л. Э. (1996). Общий углерод, органический углерод и органические вещества. Методы анализа почвы. Часть 3 Chem. Методы 34, 961–1010. DOI: 10.2136 / sssabookser5.3.c34

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Нгуен, Н. Х., Брунс, Т. Д. (2015). Микробиом эктомикоризы Pinus muricata : сообщества сообществ, влияние видов грибов и буркхолдерии как важные бактерии в многопартнерских симбиозах. Microb. Ecol. 69, 914–921. DOI: 10.1007 / s00248-015-0574-y

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Нобл Р., Добровин-Пеннингтон А., Хоббс П. Дж., Педерби Дж. И Роджер А. (2009). Летучие соединения C8 и псевдомонады влияют на образование зачатков Agaricus bisporus . Mycologia 101, 583–591. DOI: 10.3852 / 07-194

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Nunes da Rocha, U., Ван Овербек, Л., и Ван Эльзас, Дж. Д. (2009). Изучение ранее не культивируемых бактерий из ризосферы. FEMS Microbiol. Ecol. 69, 313–328. DOI: 10.1111 / j.1574-6941.2009.00702.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

О, С. Ю., Фонг, Дж. Дж., Парк, М. С., и Лим, Ю. В. (2016). Отличительная особенность микробных сообществ и функциональных профилей бактерий в доминирующей почве Tricholoma matsutake . PLoS One 11: e0168573.DOI: 10.1371 / journal.pone.0168573

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

О, С. Ю., Лим, Ю. В. (2018). Связанные с корнем бактерии, влияющие на рост мицелия Tricholoma matsutake (сосновый гриб). J. Microbiol. 56, 399–407. DOI: 10.1007 / s12275-018-7491-y

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

О, Ю. М., Ким, М., Ли-Круз, Л., Лай-Хоу, А., Го, Р., Айнуддин, Н. и др. (2012). Характерные бактериальные сообщества в ризоплане четырех видов тропических деревьев. Microb. Ecol. 64, 1018–1027. DOI: 10.1007 / s00248-012-0082-2

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Оксанен, Дж., Бланше, Ф. Г., Френдли, М., Киндт, Р., Лежандр, П., МакГлинн, Д. и др. (2017). Vegan: Пакет «Экология сообщества». Версия пакета R 2.4-3.

Google Scholar

Олссон, П. А., Шало, М., Боат, Э., Финли, Р. Д., и Седерстрём, Б. (1996). Эктомикоризный мицелий снижает активность бактерий в песчаной почве. FEMS Microbiol. Ecol. 21, 77–86. DOI: 10.1016 / 0168-6496 (96) 00042-6

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Паркс, Д. Х., Бейко, Р. Г. (2010). Выявление биологически значимых различий между метагеномными сообществами. Биоинформатика 26, 715–721. DOI: 10.1093 / биоинформатика / btq041

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Пент, М., Пылдмаа, К., и Бахрам, М. (2017). Бактериальные сообщества бореальных лесных грибов формируются как параметрами почвы, так и особенностями хозяина. Фронт. Microbiol. 8: 836. DOI: 10.3389 / fmicb.2017.00836

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Pivato, B., Offre, P., Marchelli, S., Barbonaglia, B., Mougel, C., Lemanceau, P., et al. (2009). Бактериальные эффекты на развитие арбускулярных микоризных грибов и микоризы под влиянием бактерий, грибов и растений-хозяев. Микориза 19, 81–90. DOI: 10.1007 / s00572-008-0205-2

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Пул, Э.Дж., Бендинг, Дж. Д., Уиппс, Дж. М., и Рид, Д. Дж. (2001). Бактерии, связанные с эктомикоризой Pinus sylvestris-Lactarius rufus, и их влияние на образование микоризы in vitro. New Phytol. 151, 743–751. DOI: 10.1046 / j.0028-646x.2001.00219.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Quast, C., Pruesse, E., Yilmaz, P., Gerken, J., Schweer, T., Yarza, P., et al. (2013). Проект базы данных генов рибосомных РНК SILVA: улучшенная обработка данных и веб-инструменты. Nucleic Acids Re. 41, D590 – D596. DOI: 10.1093 / nar / gks1219

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Retamal-Salgado, J., Hirzel, J., Walter, I., and Matus, I. (2017). Биоабсорбция и биоаккумуляция кадмия в соломе и зерне кукурузы (Zea mays L.) в растущих почвах, загрязненных кадмием в различных средах. Внутр. J. Env. Res. Паб. Здоровье. 14: 1399. DOI: 10.3390 / ijerph24111399

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ридлингер, Дж., Шрей, С. Д., Таркка, М. Т., Хэмпп, Р., Капур, М., и Фидлер, Х. П. (2006). Ауксофуран, новый метаболит, который стимулирует рост мухоморов, продуцируется штаммом AcH 505 бактерии-помощника микоризы streptomyces. Appl. Environ. Microbiol. 72, 3550–3557. DOI: 10.1128 / aem.72.5.3550-3557.2006

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Риллинг, Дж. И., Акуна, Дж. Дж., Садовски, М. Дж., И Хоркера, М. А. (2018). Предполагаемые азотфиксирующие бактерии, связанные с ризосферой и корневой эндосферой растений пшеницы, выращенных в андизоле на юге Чили. Фронт. Microbiol. 9: 32881. DOI: 10.3389 / fmicb.2018.02710

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Rousk, J., Båth, E., Brookes, P.C., Lauber, C.L., Lozupone, C., Caporaso, J.G., et al. (2010). Сообщества почвенных бактерий и грибов через градиент pH в пахотной почве. ISME J. 4, 1340–1351. DOI: 10.1038 / ismej.2010.58

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Савана, А., Адеолу, М., и Гупта, Р. С. (2014). Молекулярные сигнатуры и филогеномный анализ рода Burkholderia: предложение о разделении этого рода на измененный род Burkholderia, содержащий патогенные организмы, и новый род Paraburkholderia gen. ноя. укрывает экологические виды . Фронт. Genet. 5: 429. DOI: 10.3389 / fgene.2014.00429

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сегата, Н., Изард, Дж., Уолдрон, Л., Геверс, Д., Миропольский Л., Гарретт В. С. и др. (2011). Открытие и объяснение метагеномных биомаркеров. Genome Biol. 12: R60. DOI: 10.1186 / GB-2011-12-6-r60

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Силз, Дж. А., и Маргесин, Р. (2016). Обилие и разнообразие сообществ бактерий, архей и грибов вдоль высотного градиента в почвах альпийских лесов: каковы движущие факторы? Microb. Ecol. 72, 207–220. DOI: 10.1007 / s00248-016-0748-2

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сингх, Б.К., Манро, С., Поттс, Дж. М., и Миллард, П. (2007). Влияние видов трав и типа почвы на структуру микробного сообщества ризосферы пастбищных почв. Заявл. Soil Ecol. 36, 147–155. DOI: 10.1016 / j.apsoil.2007.01.004

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сингх, Б. К., Нунан, Н., Риджуэй, К. П., Макникол, Дж., Янг, Дж. П. У., Даниелл, Т. Дж. И др. (2008). Взаимосвязь между сообществами микоризных грибов и бактерий на корнях трав. Environ.Microbiol. 10, 534–541. DOI: 10.1111 / j.1462-2920.2007.01474.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сингх Д., Ли-Круз Л., Ким В.-С., Керфахи Д., Чун Дж. Х. и Адамс Дж. М. (2014). Сильные тренды повышения в составе бактериального сообщества почвы на горе Халла, Южная Корея. Soil Biol. Biochem. 68, 140–149. DOI: 10.1016 / j.soilbio.2013.09.027

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Стаффорд, У. Х. Л., Бейкер, Г.С., Браун, С.А., Бертон, С.Г., и Коуэн, Д.А. (2005). Бактериальное разнообразие в ризосфере Proteaceae видов. Environ. Microbiol. 7, 1755–1768. DOI: 10.1111 / j.1462-2920.2005.00929.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Stopnisek, N., Zühlke, D., Carlier, A., Barberán, A., Fierer, N., Becher, D., et al. (2015). Молекулярные механизмы, лежащие в основе тесной ассоциации почвы Burkholderia и грибов. ISME J. 10, 253–264. DOI: 10.1038 / ismej.2015.73

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Стори, Дж. Д. (2007). Оптимальная процедура обнаружения: новый подход к одновременной проверке значимости. J. R. Stat. Soc. Б. 69, 347–368. DOI: 10.1111 / j.1467-9868.2007.005592.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Тамару, Ю., Мияке, Х., Курода, К., Уэда, М., и Дои, Р. Х. (2010). Сравнительная геномика Clostridium cellulovorans, продуцирующая мезофильные целлюлосомы, и ее применение в производстве биотоплива посредством консолидированной биопереработки. Environ. Technol. 31, 889–903. DOI: 10.1080 / 095.2010.4

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Тимонен, С., и Хурек, Т. (2006). Характеристика культивируемых бактериальных популяций, ассоциируемых с микоризосферами Pinus sylvestris – Suillus bovinus. банка. J. Microbiol. 52, 769–778. DOI: 10.1139 / w06-016

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Трапп, М. Дж., Кромак, К., Колдуэлл, Б. А., Гриффитс, Р. П., и Трапп, Дж. М. (2012). Разнообразие матообразующих грибов в зависимости от свойств почвы, нарушения и лесного экотипа в Национальном парке Кратер-Лейк, Орегон, США. Разнообразие 4, 196–223. DOI: 10.3390 / d4020196

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Vandenkoornhuyse, P., Quaiser, A., Duhamel, M., Le Van, A., and Dufresne, A. (2015). Важность микробиома холобионта растения. New Phytol. 206, 1196–1206.DOI: 10.1111 / nph.13312

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Варминк, Дж. А., Назир, Р., и ван Эльзас, Дж. Д. (2009). Универсальные и видоспецифические бактериальные «фунгифилы» в микосферах различных базидиомицетовых грибов. Environ. Microbiol. 11, 300–312. DOI: 10.1111 / j.1462-2920.2008.01767.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Варминк, Дж. А., и ван Эльзас, Дж. Д. (2008). Отбор бактериальных популяций в микосфере Laccariaxima : участвует ли секреция типа III? ISME J. 2, 887–900. DOI: 10.1038 / ismej.2008.41

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Wu, J., He, Z. L., Wei, W. X., O’Donnell, A. G., and Syers, J. K. (2000). Количественное определение фосфора микробной биомассы в кислых почвах. Biol. Fert. Почвы 32, 500–507. DOI: 10.1007 / s003740000284

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ян, Ю., Курамаэ, Э. Э., де Холландер, М., Клинкхамер, П. Г. Л., и ван Вин, Дж. А.(2017). Функциональные признаки доминируют в отборе бактериальных сообществ в ризосфере, связанном с разнообразием. ISME J. 11, 56–66. DOI: 10.1038 / ismej.2016.108

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Янг, Т., Лю, Г., Ли, Ю., Чжу, С., Цзоу, А., Ци, Дж., И др. (2012). Микробные сообщества ризосферы и органические кислоты, выделяемые устойчивой к алюминию и чувствительной к нему соей в кислой почве. Biol. Fert. Почвы 48, 97–108. DOI: 10.1007 / s00374-011-0608-7

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Йе, Дж., Джозеф, С. Д., Джи, М., Нильсен, С., Митчелл, Д. Р. Г., Донн, С. и др. (2017). Хемолитотрофические процессы в бактериальных сообществах на поверхности обогащенных минералами биохаров. ISME J. 11, 1087–1101. DOI: 10.1038 / ismej.2016.187

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Янг, Л. С., Чу, Дж. Н., Хамид, А., и Янг, К. С. (2013). Культивированные бактерии, способствующие росту грибов, и их влияние на продуктивность Agaricus blazei . Pesqui. Agropecu. Бюстгальтеры. 48, 636–644. DOI: 10.1590 / s0100-204×2013000600009

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ю, Ф., Сонг, Дж., Лян, Дж. Ф., Ван, С. К. и Лу, Дж. К. (2020). Секвенирование всего генома и аннотация генома дикого съедобного гриба Russula griseocarnosa . Геномика 112, 603–614. DOI: 10.1016 / j.ygeno.2019.04.012

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Юань Ю., Лю Ю., Лю М., Чен К., Цзяо Ю., Лю Ю. и др. (2017). Оптимизация экстракции и биоактивности полисахарида из дикой природы Russula griseocarnosa . Saudi Pharm. J. 25, 523–530. DOI: 10.1016 / j.jsps.2017.04.018

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Юн, Ю. Б., Пак, С. В., Ча, Дж. С., и Ким, Ю. К. (2013). Биологическая характеристика различных штаммов Pseudomonas tolaasii, вызывающих болезнь коричневой пятнистости. Дж.Korean Soc. Прил. Биол. Chem. 56, 41–45. DOI: 10.1007 / s13765-012-2242-y

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Zhao, J., Zhang, R., Xue, C., Xun, W., Sun, L., Xu, Y., et al. (2014). Пиросеквенирование выявило контрастирующие бактериальное разнообразие почвы и структуру сообществ двух основных систем возделывания озимой пшеницы в Китае. Microb. Ecol. 67, 443–453. DOI: 10.1007 / s00248-013-0322-0

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Чжоу, Дж., Бай, X., и Чжао, Р. (2017). Микробные сообщества в естественной среде обитания Agaricus sinodeliciosus из провинции Синьцзян выявлены с помощью секвенирования ампликонов. Sci. Отчет 7: 15719. DOI: 10.1038 / s41598-017-16082-1 ​​

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Зул Д., Дензел С., Коц А. и Оверманн Дж. (2007). Влияние биомассы растений, разнообразия растений и содержания воды на бактериальные сообщества в почвенных лизиметрах: последствия для детерминант бактериального разнообразия. Заявл. Environ. Microb. 73, 6916–6929. DOI: 10.1128 / aem.01533-07

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Russulales News / Характеристика руссулоидных грибов

1. Характеристика руссулоидных грибов

Рис. 1. Одной из наиболее важных макроскопических характеристик Russulales является меловая или хрупкая структура мякоти, примером которой являются Russula chloroides и Lactarius deterrimus
(фото © Marco Floriani)

1.1. Какие группы грибов входят в состав Russulales?

В основе Russulales находятся два рода очень распространенных грибов с жабрами: Russula и Lactarius. Оба рода впервые были описаны в Европе, где они очень обычны и легко узнаваемы: оба рода дают шляпки от выпуклых до воронкообразных на вершине ножки, у которой никогда не бывает кольца или вольвы, и все они очень похожи по своему составу. Общий вид. Грибы Lactarius или Russula отличаются от всех других грибов с жабрами, встречающихся в поле, тем, что их мякоть не является гибкой или волокнистой, а аккуратно ломается, как кусок мела.

Недавние инвентаризации и более эффективные методы усложнили определение этих родов, показав, что не все таксоны Russula и Lactarius соответствуют этой классической европейской концепции и что несколько групп грибов с очень разной морфологией тесно связаны с этими жаберными грибами. Чтобы узнать больше об определении Russulales и руссулоидных грибов, перейдите сюда .

1.2. Основные характеристики (общие для всех родов)

Признаки, которые наиболее точно определяют Russulales, к сожалению, не обнаруживаются в полевых условиях: вам, по крайней мере, потребуется проверить две реакции окрашивания под микроскопом, если вы не хотите смотреть на молекулярные признаки, чтобы идентифицировать представителя Russulales.Действительно, все Russulales разделяют две важные реакции окрашивания: одну для спор, а другую для цистидий и других клеток или гиф с аналогичным содержанием, таких как молочнокислые.

Рис. 2. Споры Russula globispora, демонстрирующие типичную амилоидную реакцию орнамента, который в данном случае образован заметными изолированными бородавками.
(Фото © Marco Floriani)

1.2.1. Орнамент споровый амилоид

Споры Russulales варьируются от шаровидных до эллиптических по форме, а их поверхности несут орнамент, который может отсутствовать на небольшом участке чуть выше апикулюса, который во французской литературе называется «надхилярным пятном» или «пляжем».Этот орнамент варьируется от отдельных бородавок или шипов до линейных гребней и полной сеточки переменной высоты. Однако во всех случаях этот орнамент окрашивается в синевато-черный цвет при обработке реактивом Мельцера. Это называется реакцией амилоида . Активным веществом в реактиве Мельцера является йод, который вступает в реакцию с некоторыми полисахаридами в орнаменте споры, давая очень темный цвет. У некоторых групп Russula и Lactarius такая же реакция окрашивания в черный цвет вызывается массой полисахаридов, отложенных на надхилярном пятне, которое также называют амилоидом.

1.3. Вторичные особенности (общие для большинства, но не для всех родов)

1.3.1. Хрупкий контекст и сфероциты

Если вы когда-либо использовали полевой справочник для определения грибов в полевых условиях, вы, вероятно, знакомы с тем фактом, что Russula и Lactarius отличаются от всех других жаберных грибов, потому что они обладают хрупким или «меловым» оттенком. Эту характеристику легко оценить в полевых условиях, сломав ножку Russula или Lactarius: мякоть этих родов не имеет какой-либо волокнистой консистенции и ломается неравномерно (рис.1).

У других грибов с жабрами, например, у штамбов, текстура мякоти обычно сильно отличается, гораздо более волокнистая.

Но почему плоть Russula и Lactarius ломается таким образом? Ответ очень прост: их плоть в основном состоит из другого типа клеток, который отсутствует у других родов грибов. Чтобы увидеть эту разницу, вам понадобится микроскоп, но фотографии 4 и 5 позволят вам лучше понять это.На первом (рис. 4) изображена плоть русулы. Как видите, он в основном состоит из больших, почти круглых клеток, которые называются «сфероцитами» или «сфероцистами»; вторая фотография (рис. 5) снята с жаберного гриба, не принадлежащего к Russulales. Здесь плоть полностью состоит из узких длинных нитей или гиф, которые состоят из удлиненных цилиндрических клеток. Тот факт, что плоть целиком состоит из этих длинных волокон, делает ее волокнистой.

Фиг.4. Пример ткани, состоящей в основном из сфероцитов, как у большинства видов рода Russula.
(Фото © Giancarlo Partacini)

Рис. 5. Пример ткани гриба в Agaricales. Мякоть большинства грибов в основном состоит из нитчатых гиф, а сильно раздутые клетки, если они есть, обычно редки и часто ограничиваются поверхностью шляпки или тканью вуали.
(Фото © Giancarlo Partacini)

У многих видов, особенно в холодном или сухом климате, сфероциты расположены небольшими группами или «розетками», как их иногда называют в литературе: небольшие островки ткани сфероцитов, удерживаемые в нитевидном матриксе.(рис. 6)

Количество сфероцитов сильно различается у разных родов Russulales. Мы не обнаруживаем, например, сфероцитов у ресупинатных, полипороидных или клавариоидных членов в линии руссулоидов. Даже между видами Lactarius и Russula существуют важные различия. Например, у Russulaceae северного полушария у большинства Lactarius очень слабо развиты сфероциты в жаберной траме, тогда как у видов Russula обычно много сфероцитов между обеими поверхностями жабр (рис.8-9). С другой стороны, во влажном тропическом климате среда большинства более хрупких видов Russula полностью состоит из сфероцитов (рис. 7). Весьма вероятно, что сфероциты можно интерпретировать как успешную адаптацию к более быстрому расширению плодовых тел эпигейных агарикоидов.

Рис. 6-7. Слева – жаберная трама Russula ochroleuca; справа – жаберная трама члена секции Pelliculariae.
(Фото © Bart Buyck)

Рис. 8-9. Два примера жаберной трамы Russula, показывающие наличие многочисленных сфероцитов.
(Фото © Bart Buyck)

1.3.2. Лактиферы

Лактиферы представляют собой выделяющие латекс гифы, присутствующие у некоторых сырых червей, но могут быть найдены и у других грибов. Латекс – или «молоко», как мы его обычно называем – может быть дефицитным или обильным, в зависимости от вида или состояния плодовых тел, и может быть разного цвета (красный, оранжевый, желтый, зеленый, белый …) или полностью прозрачный.У большинства видов эти млечные вещества сильно реагируют с сульфоальдегидами (рис. 12). Что касается европейских Lactarius, то, вероятно, можно с уверенностью сказать, что все Lactarius источают латекс в свежем и не слишком старом состоянии (рис. 10). Это хороший признак, чтобы отделить их в полевых условиях от очень похожих видов в Russula. В других климатических условиях, особенно в тропиках, может быть гораздо сложнее использовать экссудацию латекса, чтобы отличить Russula от Lactarius. Некоторые Lactarius не выделяют латекс или выделяют его нечасто.В других случаях некоторые виды Russula могут выделять капли на жабрах (рис. 11), которые могут быть непреднамеренно приняты за бесцветное молоко, или плоть может быть ошибочно пропитана влагой.

Рис. 10. Жабры Lactarius rubroviolascens, на которых видны капли белого молока.
(Фото © Annemieke Verbeken)

Рис. 11. Красноватые капли на жабрах Russula ventricosipes
(Фото © Bart Buyck)

Хотя наличие или отсутствие лактификатов может показаться относительно однозначным признаком для наблюдения под микроскопом, в действительности все гораздо сложнее.Типичные молочницы Lactarius и некоторых других Russulales очень длинные и интенсивно разветвленные, образуя обширную сеть в контексте. Причем лактиферы оканчиваются у поверхности плодового тела в виде псевдоцистидий. В литературе говорится, что многие русулы обладают лактиферами в контексте шляпки, ножки и даже жабр, но эти структуры не совсем сопоставимы с гораздо более разветвленной сетью млечников, которые явно выделяют латекс у Lactarius. Поскольку они гораздо менее разветвлены и не оканчиваются на поверхности плодового тела псевдоцистидиями, это, вероятно, также объясняет, почему такие гифы у Russula никогда не выделяют латекса, несмотря на их идентичное содержание.Возможно, такой термин, как «tramal gloeocystidium», более точно описывает эти структуры, которые – в отличие от молочных – постепенно становятся все меньше и меньше по мере приближения к поверхности плодового тела, пока они, наконец, не превратятся в типично короткие дерматоцистидии, обнаруживаемые на поверхности тех же самых. разновидность.

Рис. 12. Часть сети млечников, заканчивающаяся псевдоцистидиями, в жабрах видов Lactarius.
(Фото © Bart Buyck)

Фиг.13. Длинные цилиндрические «млечники» у Russula гораздо менее разветвлены по сравнению с Lactarius и, возможно, лучше называть «tramal gloeocystidia» (или «gloeoplera» согласно Clmenon, 2004).
(Фото © Bart Buyck)

В своей книге «Цитология и плектология гименомицетов» (2004) Клменон различает гифы, заполненные водорастворимым содержимым (гидроплера) и не растворимым в воде содержимым (гетероплера). Лактиферы относятся к последней категории, как и глооплера (лактиферы, которые не выделяют видимого количества латекса).Согласно мнению Клменона, gloeoplera было бы правильным термином для того, что я назвал «tramal gloeocystidia» у Russula, с той важной разницей, что это различие не только количественное, но и, безусловно, морфологическое. Наконец, интересно отметить тот факт, что, по словам Клменона, некоторые (в основном тропические) лактарии обладают гидроплерами.

1.3.3. Масличные гифы

Масличные гифы присутствуют у большинства Russulales. Их легко узнать по сильно преломляющему, более или менее желтоватому и очень однородному содержимому, которое явно отличается от содержимого молочных продуктов.Маслянистые гифы всегда сильно ортохроматичны по крезиловому синему (лактиферы часто имеют более или менее метахроматическую стенку и менее интенсивное ортохроматическое содержимое) и становятся в лучшем случае розовато-красными с сульфоальдегидами (тогда как лактиферы могут становиться черными, хотя эта реакция сильно варьируется у разных видов). Обычно маслянистые гифы имеют гораздо более неправильные очертания, с отчетливыми, случайными перегородками или ограничены более короткими фрагментами гиф. Термин «масличная гифа» впервые был введен во французской литературе и был явно основан на маслоподобном аспекте этих клеток.Clmenon (2004), однако, указывает, что это просто сходство и что в этих клетках нет липидов. Поэтому он отвергает термин «маслянистые гифы», заменяя его термином «тромбоплера».

Рис. 14. Масличные гифы отличаются от лактифтов очень плотным и однородным содержимым, которое имеет гораздо более сильное преломление и лишено кристаллов (сравните с рисунком 13).
(Фото © Bart Buyck)

Фиг.15. В траме многих видов Russula также можно найти фрагменты гиф с масличным содержимым.
(Фото © Bart Buyck)

1.3.4. Эктомикоризный режим питания

Все Russula и Lactarii являются эктомикоризными, что означает, что они не могут развиваться и выживать, не будучи связанными с корнями своих растений-хозяев. То же самое, вероятно, верно для всех гипогенных родов Russulales, но не для некоторых полипороидных и других групп Russulales, некоторые из которых являются паразитическими (Bondarzewia) или сапрофитными (некоторые из кортициоидных родов).

Симбиотические структуры, называемые эктомикоризой, морфологически очень разнообразны как в полевых условиях, так и под микроскопом. Некоторые примеры из них показаны на рис. 16.

Рис. 16. Три примера эктомикоризы из родов Russula (слева, в центре) и Lactarius (справа).
(Фото © Bart Buyck)

Предварительный выбор штрих-кода ДНК для рода Russulales (Russulales, Basidiomycota)

“, “term_id”: ” 14611 “,” term_text “:” MF8 “}} MF8 91 947 Китай Цзилинь Чанбайшань Эрдаобайхэ -21947 GENT {Russula amara h 8 8 579″, “term_text”: “MF8“}} MF8 “: ядер “-” text “:” MG4 “,” term_id “:” 1276740201 “,” term_text “:” MG4 “}} MG4 9 1947 NA 542 “,” term_text “: “MF8“, “term_id”: “14585″, “term_text”: “MF8“}} MF8 000 a 000 a Rus aurea 32 “, “term_id”: “14521″, “term_text”: “MF8“}} MF8 8

aurea


1
“,” term_id “:” 14 537 “,” term_text “:” MF8 “}} MF8 540 “,” term_text “:” MF8546 “,” term_text “:” MF8 “}} MF8 623 “,” term_text “:” MF8 “}} MF8 564″, “term_text”: “MF8“, “term_id”: “1276740203”, “term_text”: “MG4“}} MG4 “,” term_id “:” 1276740189 “,” term_text “:” MG4 “}} MG4

7 Nanmu

7

1″, “term_id”: “965721094”, “term_text”: “KT1″}} KT1 6″, “term_id”: “965721006”, “term_text”: “KT6″} } KT6 2″, “term_id”: “965721002”, “term_text” KT2 “}} KT2 4″, “term_id”: “965721137”, “term_text”: “KT4″}} KT4 91 826 “, “term_id”: “1276740206”, “term_text”: “MG4“}} MG4 8 exalbicans 668″, “term_text”: “MF898 Zi-zhaigou 98 9 “,” term_id ” : “965721231”, “term_text”: “KT9″}} KT9 1″, “term_id”: “965721134”, ” term_text “:” KT1 ​​”}} KT1 ​​ “, “term_id”: “1276740207”, “term_text”: “MG4“}} MG4 “,” term_id “:” 14719 “,” term_text “:” MF8 “}} MF8 98 730 “,” term_text “:” MF8736″, “term_text”: ” MF8 “}} MF8 Cunge 9 1811
1
1 Russisch
1 fontqueri
“, “term_id”: “1276740205”, “term_text”: “MG4“}} MG4 “, “term_id”: “1276740191”, “term_text”: “MG4“}} MG4
1
1 Русс Байхэ HMAS267744
22 Entre 22 GENT -nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KT5 “,” term_id “:” 965721138 “,” term_text “:” KT5 “}} KT5 “, “term_id”: “14643″, “term_text”: “MF8“}} MF8 26

7 26

7 26 9 “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4

“, “term_id”: “1276740193”, “term_text”: “MG4“}} MG4 тип “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4“, “term_id”: “1276740209”, “term_text”: “MG4“}} MG4 “,” term_id “:” 14601 “,” term_text ” : “MF8“}} MF8 606″, “term_text”: “MF8“}} MF8 5″, “term_id_id”: “965_721025:” “,” term_text “:” KT5 “}} KT5 4 “,” term_id “:” 965721226 “,” term_text “: “KT4″}} KT4 26 type 947 26 “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441312”, “term_id”: “1246762430”, “term_text”: “KX441312”}} KX441312 572 “,” term_text ” : “MF8“}} MF8 “,” term_id “:” 14573 “,” term_text “:” MF8 “} } MF8 9194 7 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441807”, “term_id”: “1246762971”, “term_text”: “KX441807”}} KX441807 640″, “term_text”: “MF8670″, “term_text”: “MF83 “,” term_id “:” 965721136 “,” term_text “:” KT3 “}} KT3 528 “,” term_text “:” MF8 ” }} MF8 “, “term_id199:” 1276740 “term_text”: “MG4“}} MG4 “, “term_id”: “1276740187”, “term_text”: “MG4 “}} MG4 Nany26 Russula medullata 698″, “term_text”: “MF8

r
1 r
8 8 9 720″, “term_text”: “MF88 “,” term_id “:” 965721141 “,” term_text “:” KT8 “}} KT8

0

919ula 919ula 25

7 25 25 тип “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441276”, “term_id”: “1246762394”, “term_text”: “KX441276”}} KX441276

536 “,” term_text “:” MF8 91 Russula “, “term_id”: “1276740195”, “term_text”: “MG4“}} MG4 ” текст {тип: “” -текст {тип. “:” KX441048 “,” term_id “:” 1246762166 “,” term_text “:” KX441048 “}} KX441048 “, “term_id”: “14555″, “term_text”: “MF8“}} MF8 “, “term_id”: “14743″, “term_text”: “MF8“}} MF8 AS21947 00 Руссе 519″, “term_text”: “MF8“}} MF8 “,” term_id “:” 14533 “,” term_text “:” MF8 “}} MF8 31947 Entre , “attrs”: {“text”: “KX441296”, “term_id”: “1246762414”, “term_text”: “KX441296”}} KX441296 556 “,” term_text “:” MF8
1919
“,” term_id “:” 14523 “,” term_text “:” MF8 “}} MF8 “}} MG4 47 47 “,” term_id “:” 1276740197 “,” term_text “:” MG4 “}} MG4 596″, “term_text”: “MF8“, тип “ядра” { text “:” KX441324 “,” term_id “:” 1246762442 “,” term_text “:” KX441324 “}} KX441324 584 “,” term_text “:” MF8612″, “term_text”: “MF8 91000 Russula Russula “, “term_id”: “1276740213”, “term_text”: “MG4“}} MG4 722 “,” term_text “:” MF8 “,” term_id “:” 14559 “,” term_text “:” MF8 “}} MF8 “, “term_id”: “14693″, “term_text”: “MF8“}} MF8 sin 694″, “term_text “:” MF8744″, “term_text”: “MF8“, “term_id”: ” 14749 “,” term_text “:” MF8 “}} MF8 753 “,” term_text “:” MF8 “}} MF8 7″, “term_id”: “965721027”, “term_text “:” KT7 “}} KT7 6 “,” term_id “:” 965721228 “,” term_text “:” KT6 “} } KT6
Russula acrifolia HMAS267774 {“type”: “entrez-nucleors text “:” KX441351 “,” term_id “:” 1246762469 “,” term_text “:” KX441351 “}} KX441351 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441104 ” , “term_id”: “1246762222”, “term_text”: “KX441104”}} KX441104 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX441598 “,” term_id “:” 1246762716 “,” term_text ” : “KX441598”}} KX441598 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441845”, “term_id”: “1246763044”, “term_text”: “KX441845”}} KX441845 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442092”, “term_id”: “1246763416”, “term_text”: “KX442092”}} KX442092 Compactae
Russula acrifolia PC 543 / BB 08.662 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237535”, “term_id”: “1018567844”, “term_text”: “KU237535”}} KU237535 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237965”, “term_id”: “1018570006”, “term_text”: “KU237965”}} KU237965 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237381 “,” term_id “:” 1018567196 “,” term_text “:” KU237381 “}} KU237381 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KU237684 “,” term_id “:” 1018568538 “,” term_text “:” KU237684 “}} KU237684 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237821 “,” term_id “:” 1018569253 “,” term_text “:” KU237821 “}} KU237821 Compactae Европа
Russula amara 13 GENT type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT9 “,” term_id “:” 965721039 “,” term_text “:” KT9 “}} KT9 {” type “:” entrez- нуклеотид “,” attrs “: {” текст “:” KT8 “,” term_id “:” 965721240 “,” term_te ” xt “:” KT8 “}} KT8 NA NA {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT957370 “,” term_id “:” 965721386 “,” term_text “:” KT957370 “}} KT957370 NA Incrustatula Европа
Russula amara PC 532 / BB 07.782 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237524”, “term_id”: “1018567803”, “term_text”: “KU237524”}} KU237524 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237954”, “term_id”: “1018569951”, “term_text”: “KU237954”}} KU237954 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237370 “,” term_id “:” 1018567153 “,” term_text “:” KU237370 “}} KU237370 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237674 “,” term_id “:” 1018568488 “,” term_text “:” KU237674 “}} KU237674 NA Incrustatula Европа
Европа HMAS263065 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KX441319”, “term_id”: “1246762437”, “term_text”: “KX441319”}} KX441319 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX4 41566 “,” term_id “:” 1246762684 “,” term_text “:” KX441566 “}} KX441566 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441813 “,” term_id ” : “1246762983”, “term_text”: “KX441813”}} KX441813 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KX442060”, “term_id”: “1246763384”, ” term_text “:” KX442060 “}} KX442060 Polychromidia China Yunnan Kunming Qiongzhusi
Russula amoenipes HMAS263047″ тип “- NA {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “: “MG495119”, “term_id”: “1534899576”, “term_text”: “MG495119”}} MG495119 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG518376”, “term_id” “:” 1277464137 “,” term_text “:” MG518376 “}} MG518376 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG495099 “,” term_id “:” 1534899556 “, “term_text”: “MG495099”}} MG495099 Polychromidia China Jilin Changbaishan Erdaobaihe
Russula amoenolens HMAS252622 {“type”: “entrez-nucleotirs:” entrez-text12 ” “term_id”: “1246762400”, “term_text”: “KX441282”}} KX441282 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441035”, “term_id”: “1246762153 “,” term_text “:” KX441035 “}} KX441035 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MF8 “,” term_id “:” 14“}} MF8 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441529”, “term_id”: “1246762647”, “term_text”: “KX441529”}} KX441529 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441776”, “term_id”: “1246762914”, “term_text”: “KX441776”}} KX441776 {“type” : “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442023”, “term_id”: “1246763347”, “term_text”: “KX442023”}} KX442023 Ingratae China Jilin Changbaishan Эрдаобайхе
Russula amoenolens HMAS264497 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441325”, “term_id”: “1246762443”, “term_id”: “1246762443 “KX441325”}} KX441325 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441078”, “term_id”: “1246762196”, “term_text”: “KX441078”}} KX441078 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8 {“type” : “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441572”, “term_id”: “1246762690”, “term_text”: “KX441572”}} KX441572 {“type”: “entrez-нуклеотид” , “attrs”: {“text”: “KX441819”, “term_id”: “1246762995”, “term_text”: “KX441819”}} KX441819 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: { «text»: «KX442066», «term_id»: «1246763390», «term_text»: «KX442066»}} KX442066 Ingratae China Jilin Longjing Tianfuozhishan
{“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441261”, “term_id”: “1246762379”, “term_text”: “KX441261”}} KX441261 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8 NA {“type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441755 “,” term_id “:” 1246762877 “,” term_text “:” KX441755 “}} KX441755 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX442002 “,” term_id “:” 1246763326 “,” term_text “:” KX442002 “}} KX442002 Coccinula China Jilin Russ Changbaishan Huangsongpu
HMAS262377 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4“, “term_id”: “1276740202”, “term_text”: “MG4“}} MG4 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG495120”, “term_id”: “1534899577”, “term_text”: “MG495120”}} MG495120 {” тип “:” энтрез-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG518377 “,” term_id “:” 1277464138 “,” term_text “:” MG518377 “}} MG518377 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {“text”: “MG495101”, “term_id”: “1534899558”, “term_text”: “MG495101”}} MG495101 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: ” MG495109 “,” term_id “:” 1534899566 “,” term_text “:” MG495109 “}} MG495109 Coccinula China Jilin Changbaishan Erdaobaihe
BB211 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237539”, “term_id”: “1018567859”, “term_text”: “KU237539”}} KU237539 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237969”, “term_id”: “1018570026”, “term_text”: “KU237969”}} KU237969 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237385 “,” term_id “:” 1018567213 “,” term_text “:” KU237385 “}} KU237385 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237688 “,” term_id “:” 1018568558 “,” term_text “:” KU237688 “}} KU237688 NA Coccinula Европа
Russula HMAS252596 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441277”, “term_id”: “1246762395”, “term_text”: “KX441277”}} KX441277 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441030 “,” term_id “:” 1246762148 “,” term_text “:” KX441030 “}} KX441030 {” type “:” entrez- нуклеотид “,” attrs “: {” текст “:” MF8 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX441524 “,” term_id “:” 1246762642 “,” term_text ” : “KX441524”}} KX441524 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441771”, “term_id”: “1246762905”, “term_text”: “KX441771”}} KX441771 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442018”, “term_id”: “1246763342”, “term_text”: “KX442018”}} KX442018 Brevipes Китай Цзилинь Чанбайшань Сичусянь
Russula brevipes HMAS252611 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441298”, “term” , “term_text”: “KX441280”}} KX441280 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441033”, “term_id”: “1246762151”, “term_text”: ” KX441033 “}} KX441033 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MF8 “,” term_id “:” 14 “}} MF8 {“тип”: “энтрез-нуклеотид”, “attrs “: {” text “:” KX441527 “,” term_id “:” 1246762645 “,” term_text “:” KX441527 “}} KX441527 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text ” : “KX441774”, “term_id”: “1246762911”, “term_text”: “KX441774”}} KX441774 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442021″, ” term_id “:” 1246763345 “,” term_text “:” KX442021 “}} KX442021 Brevipes Китай Цзилинь Чанбайшан Эрдаобайхэ
Russula carneipes MASz

8

8

8

8

92 “,” attrs “: {” text “:” KX441286 “,” term_id “:” 1246762404 “,” term_text “:” KX441286 “}} KX441286 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {“text”: “KX441039”, “term_id”: “1246762157”, “term_text”: “KX441039”}} KX441039 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: ” MF8 “,” term_id “:” 14 NA {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441780 “, “term_id”: “1246762920”, “term_text”: “KX441780”}} KX44 1780 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442027”, “term_id”: “1246763351”, “term_text”: “KX442027”}} KX442027 Russula China Sichuan Dawo Tainingyuke
Russula carneipes HMAS268187 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX4461363”, “term” , “term_text”: “KX441363”}} KX441363 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441116”, “term_id”: “1246762234”, “term_text”: ” KX441116 “}} KX441116 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MF8 “,” term_id “:” 14 NA {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KX441857”, “term_id”: “1246763067”, “term_text”: “KX441857”}} KX441857 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX442104 “,” term_id “:” 1246763428 “,” term_text “:” KX442104 “}} KX442104 Russula China Sichuan Dawo Тайнин gyuke
Russula changbaiensis HMAS262355 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441304”, “term_id”: “124676_2422″, ” “KX441304”}} KX441304 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441057”, “term_id”: “1246762175”, “term_text”: “KX441057”}} KX441057 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14“}} MF8 {“type” : “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441551”, “term_id”: “1246762669”, “term_text”: “KX441551”}} KX441551 {“type”: “entrez-nucleotide” , “attrs”: {“text”: “KX441798”, “term_id”: “1246762954”, “term_text”: “KX441798”}} KX441798 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: { “text”: “KX442045”, “term_id”: “1246763369”, “term_text”: “KX442045”}} KX442045 Genuina Китай Цзилинь Чанбайшан Эрдао

07 Руссабайхэ S267736

{“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4 {“type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG4 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG495121 “,” term_id “:” 1534899578 “,” term_text “:” MG495121 “}} MG495121 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {“text”: “MG518378”, “term_id”: “1277464139”, “term_text”: “MG518378”}} MG518378 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: ” MG495106 “,” term_id “:” 1534899563 “,” term_text “:” MG495106 “}} MG495106 NA Genuina Китай Neimenggu Yakeshi Nanmu
8 RUSSIA 8 Nanmu Русский “type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT0″, “term_id”: “965720990”, “term_text”: “KT0″}} KT0 {“type”: “entrez -нуклеотид “,” attrs “: {” текст “:” KT2 “,” term_id “:” 965721194 “,” term_text “:” KT2 “}} KT2 NA NA NA {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text ” : “KT Malodorae Северная Америка
Russula compacta 78 0N 79PL : “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT9″, “term_id”: “965720999”, “term_text”: “KT9″}} KT9 {“type”: “entrez-nucleotide” , “attrs”: {“text”: “KT0″, “term_id”: “965721202”, “term_text”: “KT0″}} KT0 NA NA {“type”: “entrez-нуклеотид” , “attrs”: {“text”: “KT957330”, “term_id”: “965721306”, “term_text”: “KT957330”}} KT957330 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: { “text”: “KT0″, “term_id”: “965721103”, “term_text”: “KT0″}} KT0 Malodorae Северная Америка
900 07 Russula crustosa TENN067418 BPL265 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KT {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT6″, “term_id”: “965721208”, “term_text”: “KT6″}} KT6 NA NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT957338”, “term_id”: “965721322”, “term_text”: “KT957338”}} KT957338 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT8 “,” term_id “:” 965721111 “,” term_text “:” KT8 “}} KT8 Malodorae Северная Америка
Russula crustosa TENN070180 BPL251 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KT {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT3 “,” term_id “:” 965721205 “,” term_text “:” KT3 “}} KT3 NA 917 98 NA {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KT957334”, “term_id”: “965721314”, “term_text”: “KT957334”}} KT957334 { “type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT4″, “term_id”: “965721107”, “term_text”: “KT4″}} KT4 Malodorae Северная Америка
Russula decolorans GENT Fh22-196 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT3″, “term_id”: “965721033”, “term_text” “:” KT3 “}} KT3 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT2 “,” term_id “:” 965721234 “,” term_text “:” KT2 “} } KT2 NA NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT957364”, “term_id”: “965721374”, “term_text”: “KT957364”} } KT957364 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KT Tenellula Европа
Russula decolorans PC 549 / BB 07.322 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237541”, “term_id”: “1018567866”, “term_text”: “KU237541”}} KU237541 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237971”, “term_id”: “1018570036”, “term_text”: “KU237971”}} KU237971 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237387 “,” term_id “:” 1018567221 “,” term_text “:” KU237387 “}} KU237387 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237735 “,” term_id “:” 1018568795 “,” term_text “:” KU237735 “}} KU237735 NA Tenellula Europe
Rus HMAS268774 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4
{” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG4 “,” term_id “:” 1276740192 “,” term_text “:” MG4 “}} MG4 NA NA NA {“type”: “entrez-nu cleotide “,” attrs “: {” text “:” MG495110 “,” term_id “:” 1534899567 “,” term_text “:” MG495110 “}} MG495110 Russula Сычуань Русс Цзючжайгоу Чжанчжа
HMAS269713 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441408”, “term_id”: “1246762526”, “term_text”: “KX441408”}} KX441408 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441161”, “term_id”: “1246762279”, “term_text”: “KX441161”}} KX441161 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14“}} MF8 NA NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442149”, “term_id”: “1246763473”, “term_text”: “KX442149”}} KX442149 Russula Sichuan Jinguzhaigou
Russula fellea GENT Fh22-185 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT 0 “,” term_id “:” 965721030 “,” term_text “:” KT0 “}} KT0 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT NA NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT957361”, “term_id” : “965721368”, “term_text”: “KT957361”}} KT957361 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KT Russula Европа
Russula fellea PC 444 / BB 07.281 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237507”, “term_id”: “1018567745”, “term_text”: “KU237507”}} KU237507 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237936”, “term_id”: “1018569860”, “term_text”: “KU237936”}} KU237936 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237352 “,” term_id “:” 1018567082 “,” term_text “:” KU237352 “}} KU237352 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237656 “,” term_id “:” 1018568399 “,” term_text “:” KU237656 “}} KU237656 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KU237793 “,” term_id “:” 1018569113 “,” term_text “:” KU237793 “}} KU237793 Russula Европа
Russula firmula

47

47 9M “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4
NA {“type”: “entrez- нуклеотид “,” attrs “: {” текст “:” MG495124 “,” term_id “:” 15348 99581 “,” term_text “:” MG495124 “}} MG495124 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG518381 “,” term_id “:” 1277464142 “,” term_text ” : “MG518381”}} MG518381 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG495111”, “term_id”: “1534899568”, “term_text”: “MG495111 “}} MG495111 Russula Китай Сычуань Яцзян Казилашань
Russula firmula HMAS271140 {” type “:” entrez-нуклеотид: “K”, “X” “,” term_id “:” 1246762577 “,” term_text “:” KX441459 “}} KX441459 NA {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MF8 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441706 “,” term_id “:” 1246762824 ” , “term_text”: “KX441706”}} KX441706 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441953”, “term_id”: “1246763238”, “term_text”: ” KX441953 “}} KX441953 {” тип “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX442200 “,” term_id “:” 1246763524 “,” term_text “:” KX442200 “}} KX442200 Russula China Sichuan Yajiang Kazilashan
Russula foetens HMAS271173 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441470”, “term_id”: “1246762588”, “term_text”: “KX441470”} } KX441470 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441223”, “term_id”: “1246762341”, “term_text”: “KX441223”}} KX441223 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MF8 “,” term_id “:” 14 “}} MF8 {” type “:” entrez- нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441717 “,” term_id “:” 1246762835 “,” term_text “:” KX441717 “}} KX441717 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs ” : {“text”: “KX441964”, “term_id”: “1246763258”, “term_text”: “KX441964”}} KX441964 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: «KX442211», «term_id»: «1246763535», «term_text»: «KX442211»}} K X442211 Ingratae China Sichuan Litang Cunge
Russula foetens HMAS271230 {“type”: “entrez-nucleotide”, “text” attrs “:” term_id “:” 1246762594 “,” term_text “:” KX441476 “}} KX441476 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441229 “,” term_id “:” 1246762347 ” , “term_text”: “KX441229”}} KX441229 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX441723 “,” term_id “:” 1246762841 “,” term_text “:” KX441723 “}} KX441723 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441970”, “term_id”: “1246763270”, “term_text”: “KX441970”}} KX441970 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442217”, “term_id”: “1246763541”, “term_text”: “KX442217”}} KX442217 Ingratae Китай Сычуань Litang Russula fontqueri HMAS260632 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “MG4“, “term_id”: “1276740204”, “term_text”: “MG4” }} MG4 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4“, “term_id”: “1276740190”, “term_text”: “MG4“}} MG4 { “type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG495122”, “term_id”: “1534899579”, “term_text”: “MG495122”}} MG495122 {“type”: “entrez -nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MG518379 “,” term_id “:” 1277464140 “,” term_text “:” MG518379 “}} MG518379 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MG495098 “,” term_id “:” 1534899555 “,” term_text “:” MG495098 “}} MG495098 NA Tenellula China Heilongjiang Suifenula Forest Park
HMAS262398 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4 {“type” : “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG495123”, “term_id”: “1534899580”, “term_text”: “MG495123”}} MG495123 {“type”: “entrez-нуклеотид” , “attrs”: {“text”: “MG518380”, “term_id”: “1277464141”, “term_text”: “MG518380”}} MG518380 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: { “text”: “MG495097”, “term_id”: “1534899554”, “term_text”: “MG495097”}} MG495097 NA Tenellula Китай Цзилинь Чанбайшан Эрдаобайхэ {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441343”, “term_id”: “1246762461”, “term_text”: “KX441343”}} KX441343 {“type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441096 “,” term_id “:” 1246762214 “,” term_text “:” KX441096 “}} KX441096 NA {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” текс t “:” KX441590 “,” term_id “:” 1246762708 “,” term_text “:” KX441590 “}} KX441590 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441837 ” , “term_id”: “1246763030”, “term_text”: “KX441837”}} KX441837 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442084”, “term_id”: ” 1246763408 “,” term_text “:” KX442084 “}} KX442084 Tenellula Китай Цзилинь Чанбайшан Эрдаобайхэ
Russula fragilis Entre 1947 entre entre 3 “,” term_id “:” 965721235 “,” term_text “:” KT3 “}} KT3 NA NA {” type “:” entrez -nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KT957365 “,” term_id “:” 965721376 “,” term_text “:” KT957365 “}} KT957365 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KT Russula Europe
Russu la fragilis PC 443 / BB 07.791 NA NA NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237351”, “term_id”: “1018567078”, “term_text”: “KU237351 “}} KU237351 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237655 “,” term_id “:” 1018568394 “,” term_text “:” KU237655 “}} KU237655 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237792”, “term_id”: “1018569111”, “term_text”: “KU237792”}} KU237792 Russula Европа
Russula globispora HMAS269239 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441383”, “term_id”: “1246762501”, “term_text” KX441383 “}} KX441383 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX441136 “,” term_id “:” 1246762254 “,” term_text “:” KX441136 “}} KX441136 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX44163 0 “,” term_id “:” 1246762748 “,” term_text “:” KX441630 “}} KX441630 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441877 “,” term_id ” : “1246763103”, “term_text”: “KX441877”}} KX441877 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KX442124”, “term_id”: “1246763448”, ” term_text “:” KX442124 “}} KX442124 Insidiosula China Sichuan Aba S209 Road
Russula globispora PC 436 / BB 07.243 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237499”, “term_id”: “1018567714”, “term_text”: “KU237499”}} KU237499 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237929”, “term_id”: “1018569825”, “term_text”: “KU237929”}} KU237929 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237344 “,” term_id “:” 1018567051 “,” term_text “:” KU237344 “}} KU237344 NA {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237785 “,” term_id “:” 1018569080 “,” term_text “:” KU237785 “}} KU237785 Insidiosula Европа
Russula Russula gracula GENT Fh22-264 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KR364226”, “term_id”: “1025730812”, “term_text”: “KR364226”}} KR364226 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KR364094”, “term_id”: “1025730680”, “term_text”: “KR364094”}} KR364094 NA NA {“тип”: “энтрез-нуклеотид”, ” attrs “: {” text “:” KR364472 “,” term_id “:” 1025731276 “,” term_text “:” KR364472 “}} KR364472 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KR364342 “,” term_id “:” 1025731016 “,” term_text “:” KR364342 “}} KR364342 Russula Europe
Russula gracillima

7

“, “term_id”: “1276740208”, “term_text”: “MG4“}} MG4 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {” text “:” MG495125 “,” term_id “:” 1534899582 “,” term_text “:” MG495125 “}} MG495125 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG518382 ” , “term_id”: “1277464143”, “term_text”: “MG518382”}} MG518382 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG495112”, “term_id” “:” 1534899569 “,” term_text “:” MG495112 “}} MG495112 Russula China Jilin Changbaishan Erdaobaihe
Russula gracillima PC 441 / BB 07.785 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237504”, “term_id”: “1018567733”, “term_text”: “KU237504”}} KU237504 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237934”, “term_id”: “1018569850”, “term_text”: “KU237934”}} KU237934 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237349 “,” term_id “:” 1018567070 “,” term_text “:” KU237349 “}} KU237349 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237653 “,” term_id “:” 1018568384 “,” term_text “:” KU237653 “}} KU237653 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237790 “,” term_id “:” 1018569105 “,” term_text “:” KU237790 “}} KU237790 Russula Европа
Russula gracillima

8 / BB1947.786
{“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237568”, “term_id”: “1018567974”, “term_text”: “KU237568”}} KU237568 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237996”, “term_id”: “1018570160”, “term_text”: “KU237996”}} KU237996 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237416 “,” term_id “:” 1018567333 “,” term_text “:” KU237416 “}} KU237416 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237712 “,” term_id “:” 1018568677 “,” term_text “:” KU237712 “}} KU237712 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KU237854 “,” term_id “:” 1018569423 “,” term_text “:” KU237854 “}} KU237854 Russula Европа
Russula insignis {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“текст”: “MG4“, “term_id”: “1276740194”, “term_te” xt “:” MG4 “}} MG4 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG495126 “,” term_id “:” 1534899583 “,” term_text “:” MG495126 ” }} MG495126 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG518383”, “term_id”: “1277464144”, “term_text”: “MG518383”}} MG518383 NA NA Ingratae China Neimenggu Zalantun Xiushui
Russula insignis HMAS267740 {“type”: “entrez-text” nucleotirs , “term_id”: “1246762459”, “term_text”: “KX441341”}} KX441341 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441094”, “term_id”: ” 1246762212 “,” term_text “:” KX441094 “}} KX441094 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MF8 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441588”, “term_id”: “1246762706”, “term_text”: “KX441588”}} KX441588 {“type”: “entrez-nucleo tide “,” attrs “: {” text “:” KX441835 “,” term_id “:” 1246763027 “,” term_text “:” KX441835 “}} KX441835 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs ” : {“text”: “KX442082”, “term_id”: “1246763406”, “term_text”: “KX442082”}} KX442082 Ingratae China Neimenggu Yakeshi Nanmu
9000 Russisch
9000 Russisch {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441346”, “term_id”: “1246762464”, “term_text”: “KX441346”}} KX441346 {“type” : “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441099”, “term_id”: “1246762217”, “term_text”: “KX441099”}} KX441099 {“type”: “entrez-нуклеотид” , “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: { “text”: “KX441593”, “term_id”: “1246762711”, “term_text”: “KX441593”}} KX441593 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441840 “,” term_id “:” 1246763035 “,” term_text “:” KX441840 “}} KX441840 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442087”, “term_id”: “1246763411”, “term_text”: “KX442087”}} KX442087 Ingratae Китай Neimenggu Zalantun Xiushui
Russula Integra GENT Fh22-172 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT NA NA {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KT957356”, “term_id”: “965721358”, “term_text”: “KT957356”}} KT957356 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT6″, “term_id”: “965721129”, “term_text”: “KT6″}} KT6 Полихромидия Европа
Russula Integra PC 518 / BB 07.198 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237513”, “term_id”: “1018567765”, “term_text”: “KU237513”}} KU237513 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237943”, “term_id”: “1018569896”, “term_text”: “KU237943”}} KU237943 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237359 “,” term_id “:” 1018567109 “,” term_text “:” KU237359 “}} KU237359 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237663 “,” term_id “:” 1018568433 “,” term_text “:” KU237663 “}} KU237663 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237799 “,” term_id “:” 1018569143 “,” term_text “:” KU237799 “}} KU237799 Polychromidia Europe
Russula integriformis 947 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“текст”: “KX441065”, “term_id”: “124676218 3 “,” term_text “:” KX441065 “}} KX441065 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MF8 “,” term_id “:” 14 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441806”, “term_id”: “1246762969”, “term_text”: “KX441806 “}} KX441806 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX442053 “,” term_id “:” 1246763377 “,” term_text “:” KX442053 “}} KX442053 Полихромидия Китай Цзилинь Чанбайшань Эрдаобайхэ
Russula integriformis HMAS262403 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “text_13id”: “{” “1246762431”, “term_text”: “KX441313”}} KX441313 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441066”, “term_id”: “1246762184”, “term_text “:” KX441066 “}} KX441066 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MF8 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442054”, “term_id”: “1246763378”, “term_text”: “KX442054”}} KX442054 Polychromidia China Jilin Changbaishan 917
Russula katarinae HMAS269080 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441380”, “term_id”: “1246762498”, “term_text”: “KX441380” }} KX441380 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KX441133”, “term_id”: “1246762251”, “term_text”: “KX441133”}} KX441133 { “type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14“}} MF8 NA NA { “type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442121”, “term_id”: “1246763445”, “term_text”: “KX442121”}} KX442121 Polychromidia China Yu nnan Nanhua Zixishan
Russula katarinae HMAS269755 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KX441410”, “term_id25text”: “12467” “:” KX441410 “}} KX441410 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441163 “,” term_id “:” 1246762281 “,” term_text “:” KX441163 “} } KX441163 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14“}} MF8 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441904”, “term_id”: “1246763150”, “term_text”: “KX441904”}} KX441904 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442151”, “term_id”: “1246763475”, “term_text”: “KX442151”}} KX442151 Polychromidia China Yunnanis Nan
Russula luteotacta GENT Fh22-187 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT2″, “term_id”: “965721032”, “term_text”: “KT2″}} KT2 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT1″, “term_id”: “965721233”, “term_text”: “KT1 “}} KT1 NA NA {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT957363 “,” term_id “:” 965721372 “,” term_text “:” KT957363 “}} KT957363 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT Russula Европа
Russula luteotacta PC 452 / BB 07.188 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237512”, “term_id”: “1018567761”, “term_text”: “KU237512”}} KU237512 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237942”, “term_id”: “1018569890”, “term_text”: “KU237942”}} KU237942 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237358 “,” term_id “:” 1018567105 “,” term_text “:” KU237358 “}} KU237358 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237662 “,” term_id “:” 1018568429 “,” term_text “:” KU237662 “}} KU237662 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KU237798 “,” term_id “:” 1018569138 “,” term_text “:” KU237798 “}} KU237798 Russula Европа
Russula medullata

47
“entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441268”, “term_id”: “1246762386”, “term_text”: “KX441268”}} KX441268 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“текст”: “KX441021”, “term_id”: “1246762139”, “term_t” ext “:” KX441021 “}} KX441021 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MF8 “,” term_id “:” 14 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441762”, “term_id”: “1246762887”, “term_text”: “KX441762”}} KX441762 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442009”, “term_id”: “1246763333”, “term_text”: “KX442009”}} KX442009 Heterophyllidia Китай Xizang Mainling Nanyi
Russula medullata HMAS251761 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG495118 “,” term_id “:” 1534899575 “,” term_text “:” MG495118 “}} MG495118 {“тип”: “энтрез-нуклеотид”, “attrs” “: {” text “:” MG518374 “,” term_id “:” 1277464135 “,” term_text “:” MG518374 “}} MG518374 NA NA Heterophyllidia China Xizang
HMAS262348 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4“, “term_id”: “1276740200”, “term_text”: “MG4“}} MG4 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4“, “term_id”: “1276740188”, “term_text”: “MG4“}} MG4 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG518375”, “term_id”: “1277464136”, “term_text”: “MG518375”}} MG518375 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG495100 “,” term_id “:” 1534899557 “,” term_text “:” MG495100 “}} MG495100 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MG495108 “,” term_id “:” 1534899565 “,” term_text “:” MG495108 “}} MG495108 Heterophyllidia Jilin Changbaishan Erdaobaihe 91 798
Russula murrillii HMAS271049 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441438”, “term_id”: “1246762556”, “term_text”: ” KX441438 “}} KX441438 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX441191 “,” term_id “:” 1246762309 “,” term_text “:” KX441191 “}} KX441191 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14“}} MF8 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441685”, “term_id”: “1246762803”, “term_text”: “KX441685”}} KX441685 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441932”, “term_id”: “1246763200”, “term_text”: “KX441932”}} KX441932 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {” text “:” KX442179 “,” term_id “:” 1246763503 “,” term_text “:” KX442179 “}} KX442179 Incrustatula China Yunnan Dêqên Baimangxueshan
{“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441460”, “term_id”: “1246762578”, “term_text”: “KX441460”}} KX441460 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441213”, “term_id”: “1246762331”, “term_text”: “KX441213”}} KX441213 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14“}} MF8 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {” text “:” KX441707 “,” term_id “:” 1246762825 “,” term_text “:” KX441707 “}} KX441707 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441954 ” , “term_id”: “1246763239”, “term_text”: “KX441954”}} KX441954 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442201”, “term_id”: ” 1246763525 “,” term_text “:” KX442201 “}} KX442201 Incrustatula China Yunnan Dêqên Baimangxueshan
Russula nigricans

7 9 BB342

{“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237495”, “term_id”: “1018567697”, “term_text”: “KU237495”}} KU237495 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237924”, “term_id”: “1018569801”, “term_text”: “KU237924”}} KU237924 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237339 “,” term_id “:” 1018567033 “,” term_text “:” KU237339 “}} KU237339 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237643 “,” term_id “:” 1018568333 “,” term_text “:” KU237643 “}} KU237643 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237781 “,” term_id “:” 1018569060 “,” term_text “:” KU237781 “}} KU237781 Compactae Европа
Russula nigricans 917E20 UPS.09.2004–07 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “DQ422010”, “term_id”: “602″, “term_text”: “DQ422010”}} DQ422010 { “type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “DQ422010”, “term_id”: “602″, “term_text”: “DQ422010”}} DQ422010 NA NA NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “DQ421952”, “term_id”: “525″, “term_text”: “DQ421952”}} DQ421952 Compactae Европа
Russula ochroleuca GENT Fh22-211 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT7″, “term_id”: “965721037”, “term_text”: “KT7″}} KT7 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT6″, “term_id”: “965721238”, “term_text”: “KT6 “}} KT6 NA NA {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT957368 “,” term_id “:” 965721382 “,” term_text “:” KT957368 “}} KT957368 {” тип “:” entrez-n ucleotide “,” attrs “: {” text “:” KT Russula Europe
PC 527 / BB 07.303 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237519”, “term_id”: “1018567788”, “term_text”: “KU237519”}} KU237519 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237949”, “term_id”: “1018569926”, “term_text”: “KU237949”}} KU237949 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237365 “,” term_id “:” 1018567133 “,” term_text “:” KU237365 “}} KU237365 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237669 “,” term_id “:” 1018568463 “,” term_text “:” KU237669 “}} KU237669 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237805 “,” term_id “:” 1018569173 “,” term_text “:” KU237805 “}} KU237805 Russula Европа
Russula pascua

7

{“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“текст”: “KX441029”, “term_id”: “1246762147”, “term_text “:” KX441029 “}} KX441029 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MF8 “,” term_id “:” 14 “} } MF8 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441523”, “term_id”: “1246762641”, “term_text”: “KX441523”}} KX441523 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441770 “,” term_id “:” 1246762903 “,” term_text “:” KX441770 “}} KX441770 NA Polychromidia Китай Цзилинь Чанбайшан Эрдаобайхэ
Russula pascua HMAS253222 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4“, “term_40210”: “127676740210:” term_text “:” MG4 “}} MG4 NA {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG495127 “,” term_id “:” 1534899584 “,” term_text “: “MG495127”}} MG495127 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG518384”, “term_id”: “1277464145”, “term_text”: “MG518384”}} MG518384 {“type”: “entrez-nu cleotide “,” attrs “: {” text “:” MG495103 “,” term_id “:” 1534899560 “,” term_text “:” MG495103 “}} MG495103 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs ” : {“text”: “MG495113”, “term_id”: “1534899570”, “term_text”: “MG495113”}} MG495113 Polychromidia China Xizang Mainling Nanyi
NA {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “MG4 { “type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG495128”, “term_id”: “1534899585”, “term_text”: “MG495128”}} MG495128 {“type”: “entrez -nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MG518385 “,” term_id “:” 1277464146 “,” term_text “:” MG518385 “}} MG518385 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MG495105 “,” term_id “:” 1534899562 “,” term_text “:” MG495105 “}} MG495105 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text ” : “MG495114”, “term_id”: “1534899571”, “term_text”: “MG495 114 “}} MG495114 Полихромидия Китай Цзилинь Чанбайшань Эрдаобайхэ
Russula pseudocyanoxantha HMAS252849 ” тип “нуклеотид {тип: {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MF8 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441542”, “term_id”: “1246762660 “,” term_text “:” KX441542 “}} KX441542 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441789 “,” term_id “:” 1246762936 “,” term_text “: “KX441789”}} KX441789 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442036”, “term_id”: “1246763360”, “term_text”: “KX442036”}} KX442036 Cyanoxanthinae Китай Юньнань Jingdong Ailaoshan
Russula pseudocyanoxantha H MAS271691 NA {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KX441236”, “term_id”: “1246762354”, “term_text”: “KX441236”}} KX441236 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441730 “,” term_id “:” 1246762848 “,” term_text “:” KX441730 “}} KX441730 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX441977 “,” term_id “:” 1246763282 “,” term_text “:” KX441977 “}} KX441977 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX442224 “,” term_id “:” 1246763548 “,” term_text “:” KX442224 “}} KX442224 Cyanoxanthinae Китай Юньнань Пуэр Лайянгхэ
9000 Руссе 00 Руссе type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441259 “,” term_id “:” 1246762377 “,” term_text “:” KX441259 “}} KX441259 {” type “:” entrez- нуклеотид “,” attrs “: {” текст “:” KX44 1012 “,” term_id “:” 1246762130 “,” term_text “:” KX441012 “}} KX441012 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MF8 “,” term_id ” : “14 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441506”, “term_id”: “1246762624”, ” term_text “:” KX441506 “}} KX441506 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441753 “,” term_id “:” 1246762873 “,” term_text “:” KX441753 ” }} KX441753 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442000”, “term_id”: “1246763324”, “term_text”: “KX442000”}} KX442000 Ingratae China Xizang Nyingchi Nanyi
Russula pseudograta HMAS251868 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“1273 “:” KX44 1246762391 “,” term_text “:” KX441273 “}} KX441273 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX441026 “,” term_id “:” 1246762144 “,” term_text ” : “KX441026”}} KX441026 {“тип”: “entrez-nuc leotide “,” attrs “: {” text “:” MF8 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs ” : {“text”: “KX441520”, “term_id”: “1246762638”, “term_text”: “KX441520”}} KX441520 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441767”, “term_id”: “1246762897”, “term_text”: “KX441767”}} KX441767 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442014”, “term_id” “:” 1246763338 “,” term_text “:” KX442014 “}} KX442014 Ingratae China Xizang Nyingchi Nanyi
Russula pseudograta {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: { “text”: “KX441049”, “term_id”: “1246762167”, “term_text”: “KX441049”}} KX441049 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8 “,” term_id “:” 14 “}} MF8 91 798 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441543”, “term_id”: “1246762661”, “term_text”: “KX441543”}} KX441543 {“type” : “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441790”, “term_id”: “1246762938”, “term_text”: “KX441790”}} KX441790 {“type”: “entrez-nucleotide” , “attrs”: {“text”: “KX442037”, “term_id”: “1246763361”, “term_text”: “KX442037”}} KX442037 Ingratae China Xizang Nyingchi Nanyi
HMAS251523 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441263”, “term_id”: “1246762381”, “term_text”: “KX441263”}} KX441263 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441016”, “term_id”: “1246762134”, “term_text”: “KX441016”}} KX441016 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MF8 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441510 “,” term_id “:” 124676262 8 “,” term_text “:” KX441510 “}} KX441510 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441757 “,” term_id “:” 1246762880 “,” term_text ” : “KX441757”}} KX441757 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442004”, “term_id”: “1246763328”, “term_text”: “KX442004”}} KX442004 Ingratae China Xizang Yadong Xiasima
Russula pseudopectinatoides HMAS251552 {“type”: “entrez” nucleotide “, term_id “:” 1276740211 “,” term_text “:” MG4 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG4 “,” term_id “:” 1276740196 ” , “term_text”: “MG4“}} MG4 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG495129”, “term_id”: “1534899586”, “term_text”: ” MG495129 “}} MG495129 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG518386 “,” term_id “:” 1277464147 “,” term_text “:” MG518386 “}} MG518386 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: { “text”: “MG495104”, “term_id”: “1534899561”, “term_text”: “MG495104”}} MG495104 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG495115 “,” term_id “:” 1534899572 “,” term_text “:” MG495115 “}} MG495115 Ingratae Китай Xizang Yadong Xiasima
Husula pseudopectinatoides 847 108 entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG4 “,” term_id “:” 1276740212 “,” term_text “:” MG4 “}} MG4 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MG4 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MG495130 “,” term_id “:” 1534899587 “,” term_text “:” MG495130 “}} MG495130 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG518387 “, “term_id”: “1277464148”, “term_text”: “MG518387”}} MG518387 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG495102”, “term_id”: “1534899559 “,” term_text “:” MG495102 “}} MG495102 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG495116”, “term_id”: “1534899573”, “term_text”: “MG495116”}} MG495116 Ingratae Китай Xizang Yadong Xiasima
Russula pseudopectinatoides HMAS265020 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441336”, “term_id_text”: “term_id54” “:” KX441336 “}} KX441336 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441089 “,” term_id “:” 1246762207 “,” term_text “:” KX441089 “} } KX441089 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14“}} MF8 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441583 “,” term_id “:” 1246762701 “,” term_text “:” KX441583 “}} KX441583 {” type “:” entrez- нуклеотид “,” attrs “: {” текст “:” KX441830 “,” term_id “:” 1246763017 “,” term_text “:” KX441830 “}} KX441830 {” тип “:” entrez-нуклеотид “,” attrs ” : {“текст”: “KX442077”, “term_id”: “1246763401”, “term_t” ext “:” KX442077 “}} KX442077 Ingratae China Xizang Gongbogyamda Cuogaohu
Russula pseudopersicina HMAS26419484″ тип “ядра: {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441077 ” , “term_id”: “1246762195”, “term_text”: “KX441077”}} KX441077 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: ” 14 “}} MF8 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX441571 “,” term_id “:” 1246762689 “,” term_text ” : “KX441571”}} KX441571 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441818”, “term_id”: “1246762993”, “term_text”: “KX441818”}} KX441818 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442065”, “term_id”: “1246763389”, “term_text”: “KX442065”}} KX442065 Russula Китай Джил in Longjing Tianfuozhishan
Russula pseudopersicina HMAS267779 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441352”, “term_id” “:” KX441352 “}} KX441352 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441105 “,” term_id “:” 1246762223 “,” term_text “:” KX441105 “} } KX441105 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14“}} MF8 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441599 “,” term_id “:” 1246762717 “,” term_text “:” KX441599 “}} KX441599 {” type “:” entrez- нуклеотид “,” attrs “: {” текст “:” KX441846 “,” term_id “:” 1246763046 “,” term_text “:” KX441846 “}} KX441846 {” тип “:” entrez-нуклеотид “,” attrs ” : {“text”: “KX442093”, “term_id”: “1246763417”, “term_text”: “KX442093”}} KX442093 Russula China Neimenggu Yakeshi Nanmu
HMAS271076 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MG4 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG4 “,” term_id “:” 1276740198 “,” term_text “:” MG4 “}} MG4 {” type “:” entrez- нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG495131 “,” term_id “:” 1534899588 “,” term_text “:” MG495131 “}} MG495131 NA NA {” type “:” entrez- нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” MG495117 “,” term_id “:” 1534899574 “,” term_text “:” MG495117 “}} MG495117 Russula China Yunnan Dêqên Baimangxueshan

7

7 Russula queleti
HMAS271149 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441462”, “term_id”: “1246762580”, “term_text”: “KX441462”}} KX441462 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441215”, “term_id”: “1246762333”, “term_text”: “KX441215”}} KX441215 {“type” : “энтрез-нуклеотид”, ” attrs “: {” text “:” MF8 “,” term_id “:” 14 “}} MF8 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX441709 “,” term_id “:” 1246762827 “,” term_text “:” KX441709 “}} KX441709 NA {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX442203 “,” term_id “:” 1246763527 “,” term_text “:” KX442203 “}} KX442203 Russula China Yunnan Dêqên Baimangxueshan
Russula
Russula Russula “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441299”, “term_id”: “1246762417”, “term_text”: “KX441299”}} KX441299 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441052”, “term_id”: “1246762170”, “term_text”: “KX441052”}} KX441052 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {” text “:” MF8 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441546 ” , “term_id”: “1246762664”, “term_text”: “KX441546”}} KX4415 46 NA NA Incrustatula Ботанический сад Китая Юньнань Юлонг
Russula rosea HMAS276801 {“type”: ” “:” LT602946 “,” term_id “:” 10514 “,” term_text “:” LT602946 “}} LT602946 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” LT602969 “, “term_id”: “10537″, “term_text”: “LT602969”}} LT602969 NA NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442534”, “term_id”: “1246339158”, “term_text”: “KX442534”}} KX442534 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442557”, “term_id”: “1246339181 “,” term_text “:” KX442557 “}} KX442557 Incrustatula China Fujian Sanming Yangshan
Russula sinica HMAS271022 типа” ядер “,” ядер “{ : {“text”: “KX441433”, “term_id”: “1246762551”, “term_text”: “KX44 1433 “}} KX441433 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441186 “,” term_id “:” 1246762304 “,” term_text “:” KX441186 “}} KX441186 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441680”, “term_id”: “1246762798”, “term_text”: “KX441680”}} KX441680 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441927”, “term_id”: “1246763191”, “term_text”: “KX441927”}} KX441927 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {” text “:” KX442174 “,” term_id “:” 1246763498 “,” term_text “:” KX442174 “}} KX442174 Russula China Yunnan Yulong Botany Garden
97 Russula 97 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441434”, “term_id”: “1246762552”, “term_text”: “KX441434”}} KX441434 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441187 “,” term_id “: “1246762305”, “term_text”: “KX441187”}} KX441187 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14 “}} MF8 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441681 “,” term_id “:” 1246762799 “,” term_text “:” KX441681 “} } KX441681 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441928”, “term_id”: “1246763193”, “term_text”: “KX441928”}} KX441928 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX442175 “,” term_id “:” 1246763499 “,” term_text “:” KX442175 “}} KX442175 Russula China Yunnan Yulong Ботанический сад
Russula turci HMAS271703 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441484”, “term_id”: “1246762602”, “term_text” : “KX441484”}} KX441484 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441237”, “term_id”: “1246762355”, “term_text”: “KX441237”}} KX441237 {“тип”: “энтрез-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8“, “term_id”: “14“}} MF8 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: ” KX441731 “,” term_id “:” 1246762849 “,” term_text “:” KX441731 “}} KX441731 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441978 “,” term_id ” : “1246763284”, “term_text”: “KX441978”}} KX441978 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX442225”, “term_id”: “1246763549”, ” term_text “:” KX442225 “}} KX442225 Incrustatula China Yunnan Puer Laiyanghe
Russula turci HMAS271765 , тип” ядер: “тип” ядра “:” ядер “{ text “:” KX441489 “,” term_id “:” 1246762607 “,” term_text “:” KX441489 “}} KX441489 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX441242 ” , “term_id”: “1246762360”, “term_text”: “KX441242”}} KX441242 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “MF8 {” type “: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441736”, “term_id”: “1246762854”, “term_text”: “KX441736”}} KX441736 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441983”, “term_id”: “1246763293”, “term_text”: “KX441983”}} KX441983 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {” text “:” KX442230 “,” term_id “:” 1246763554 “,” term_text “:” KX442230 “}} KX442230 Incrustatula Китай Юньнань Пуэр Лайянгхэ

Русс “type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441493”, “term_id”: “1246762611”, “term_text”: “KX441493”}} KX441493 {“type”: “entrez -nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KX441246 “,” term_id “:” 1246762364 “,” term_text “:” KX441246 “}} KX441246 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” MF8 “,” term_id “:” 14 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text ” : “KX441740”, “term_id”: “1246762858”, “term_text”: “KX441740”}} KX 441740 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KX441987”, “term_id”: “1246763301”, “term_text”: “KX441987”}} KX441987 {“type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KX442234 “,” term_id “:” 1246763558 “,” term_text “:” KX442234 “}} KX442234 Incrustatula China Yunolongmen Yiliang
Russula zvarae GENT Fh22-175 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KT NA NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KT957358”, “term_id”: “965721362”, “term_text”: “KT957358”} } KT957358 {“type”: “entrez-nucleotide”, “attrs”: {“text”: “KT8″, “term_id”: “965721131”, “term_text”: “KT8″}} KT8 Incrustatula Европа
Russula zvarae PC 538 / BB 08.639 {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237530”, “term_id”: “1018567825”, “term_text”: “KU237530”}} KU237530 NA {“type”: “entrez-нуклеотид”, “attrs”: {“text”: “KU237960”, “term_id”: “1018569981”, “term_text”: “KU237960”}} KU237960 {“type”: ” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237376 “,” term_id “:” 1018567177 “,” term_text “:” KU237376 “}} KU237376 {” type “:” entrez-нуклеотид “,” attrs “: {” text “:” KU237680 “,” term_id “:” 1018568518 “,” term_text “:” KU237680 “}} KU237680 {” type “:” entrez-nucleotide “,” attrs “: {” text “:” KU237816 “,” term_id “:” 1018569228 “,” term_text “:” KU237816 “}} KU237816 Incrustatula Europe

Неочищенный макрополисахарид макрополисахарида, обработанный щелочью, TL из русского макрополисахарида, антиоксидант / Путь NF-κB

Физико-химическая характеристика RualaCap

Для приготовления полисахаридной фракции из R . alatoreticula применялась совершенно отличная процедура экстракции, в которой использовались остатки процесса горячей воды и щелочь в качестве экстрагирующего растворителя. Наконец, из обработанного щелочью полисахарида была выделена водорастворимая фракция, обозначенная как RualaCap, которая имела светло-коричневый цвет. Как и ожидалось, этот метод привел к высокому проценту извлечения, который был примерно в четыре раза лучше, чем гидротермальный процесс 3 . После этого полимеры были исследованы химически, и результаты приведены в таблице 1.В целом, углеводы были обнаружены как основной компонент, связанный с небольшим количеством белка. Кроме того, результаты спектроскопии предполагали, что β-глюкан был доминирующим компонентом полисахаридного остова, в то время как α-связанная глюкоза присутствовала в следовых количествах. Данные были дополнительно подтверждены с помощью высокоэффективной тонкослойной хроматографии (ВЭТСХ), где на хроматограмме отображалась высокоинтенсивная полоса, соответствующая D-глюкозе (рис. 1а). Однако анализ газовой хроматографии-масс-спектрометрии (ГХ-МС) выявил присутствие трех моносахаридов, которые существовали в следующем порядке: глюкоза> галактоза> манноза (рис.1б).

Таблица 1 Химическая характеристика холодного щелочного экстрагированного сырого полисахарида RualaCap из Russula alatoreticula (среднее значение ± стандартное отклонение; n = 3). Рисунок 1

Структурная и молекулярная характеристика холодного щелочного экстрагированного сырого полисахарида, RualaCap, выделенного из Russula alatoreticula . ( a ) Идентификация моносахаридов в гидролизованных полисахаридах с помощью ВЭТСХ, Дорожки: 1: L-арабиноза, 2: D-фруктоза, 3: D-фукоза, 4: D-галактоза, 5: RualaCap, 6: D-глюкоза, 7: D-манноза, 8: D-рамноза, 9: D-ксилоза ( b ) ГХ-МС-хроматограмма дериватизированного полисахарида (время удерживания D-маннозы: 16.6 мин, D-глюкоза: 16,7 мин, D-галактоза: 16,8 мин) ( c ) FT-IR спектр ( d ) Изменения в максимуме поглощения комплекса полисахарид Конго красный при различных концентрациях раствора гидроксида натрия.

В целом, структура полисахаридов грибов очень разнообразна из-за различного состава сахаров, типа связи, конформации, молекулярной массы и т. Д., Которые вместе оказывают значительное влияние на биоактивность. 12 . Например, манноза была идентифицирована как важный компонент углеводов, экстрагированных из Inonotus obliquus и Tremella mesenterica , проявляющих антиоксидантные и иммуностимулирующие свойства соответственно.Напротив, галактоза и глюкоза, обнаруженные как активные компоненты в полисахариде из Agrocybe cylindracea , играли важную роль в антиоксидантной активности. В другом исследовании сообщалось, что эффект улавливания свободных радикалов Hirsutella sp сильно зависит от маннозы и галактозы 13 . Помимо D-глюкозы мономеры, связанные β-гликозидными связями, называемые β-D-глюканом, также обладают большим потенциалом в широком спектре областей из-за их конфигурации и мощных фармакологических свойств 14 .Таким образом, можно с уверенностью сказать, что наличие этих устройств в RualaCap также может быть полезным для достижения его функциональных свойств.

Инфракрасная спектроскопия с преобразованием Фурье (FT-IR)

FT-IR спектроскопия – это простой, экономящий время, точный и неразрушающий метод, который требует небольшого количества образца для прогнозирования функциональных групп 15 . Как показано на рис. 1с, широкая полоса группы ОН была обнаружена при 3433,09 см, –1 , а слабый сигнал валентного колебания С-Н был обнаружен при 2929.27 см −1 . Наблюдались асимметричный пик растяжения при 1650,62 см -1 и более слабая симметричная полоса растяжения около 1400 см -1 , что указывает на присутствие уроновой кислоты. Кроме того, в спектре показаны характерные полосы в пределах 1200–1000 см, –1 , которые можно отнести к гликозидной связи (валентные колебания C-C и C-O пиранозного кольца). Сигнал 899 см -1 можно отнести к полосе C-H в β-конфигурации 16,17 . На основании вышеупомянутых результатов можно было предположить, что RualaCap представляет собой богатую углеводами фракцию, состоящую из сахарных звеньев в конфигурации β-типа.

Изображение спиральной конформации с помощью реакции Конго красного

Известно, что полисахариды грибов существуют в одинарной или тройной спиральной конфигурации, а также в виде случайной спирали, которую можно обнаружить с помощью конго красного. Этот колориметрический анализ основан на связывании красителя со спиральным полисахаридом, что приводит к батохромному сдвигу от 488 до 516 нм (> 20 нм) 18 . Соответственно, влияние смеси конго красного и RualaCap было оценено для конформационной характеристики.Как показано на фиг. 1d, раствор реагента показал начальный сдвиг на 5 единиц с 497 до 503 нм, а затем λmax постепенно уменьшался. Это можно объяснить этапами процесса экстракции, на которых использовался NaOH, ответственный за разрушение спиральной формы. На данный момент сообщается, что несколько биоактивных полисахаридов имеют тройную спиральную структуру. В отличие от этого, значительную иммуностимулирующую, а также антиоксидантную активность проявляли биополимеры, экстрагированные из Russula senecis 3 , Russula albonigra 19 и Ganoderma lucidum 4 , которые не содержали никаких упорядоченная структура.

Оценка антиоксидантной активности RualaCap

Антиоксидантные соединения спасают клетки от окислительного стресса, поскольку они способны отдавать водород или электроны и гасить свободные радикалы 20 . Таким образом, в поисках новых биоматериалов с прямой антиоксидантной способностью, RualaCap был подвергнут воздействию шести систем in vitro , и результат был суммирован в таблице 2. Первоначально был проведен анализ активности по улавливанию гидроксильных радикалов, поскольку этот высокоактивный радикал способен к разрушая почти каждую клеточную молекулу.Результаты показали, что экстракт ингибировал образование 5,74%, 14,99%, 28,07%, 42,22% и 52,14% радикала на уровне 100, 500, 1000, 1500 и 2000 мкг / мл соответственно (рис. 2а). Аналогичная тенденция способности гасить радикалы наблюдалась также в случае 2,2-дифенил-1-пикрилгидразила (DPPH), коммерчески доступного органического соединения, которое широко использовалось для оценки антиоксидантной активности исследуемого лекарственного средства. В конце концов, RualaCap продемонстрировал значительную концентрацию действий, и результаты были представлены на рис.2b. При уровне экстракта 100, 500, 1000, 1500 и 2000 мкг / мл скорость гашения составляла 16,11%, 28,33%, 35,12%, 40,26% и 50,5% соответственно, демонстрируя адекватную способность. Кроме того, 2,2′-азино-бис (3-этилбензотиазолин-6-сульфоновая кислота) (ABTS) также использовалась в настоящем исследовании для дополнительной оценки антиоксидантного эффекта. Результаты показали, что полисахарид обладает сильной способностью улавливать радикалы в зависимости от концентрации (фиг. 2c). Поскольку уровень составлял от 100, 300, 500, 700 до 1000 мкг / мл, ингибирующая активность RualaCap увеличивалась с 20.44%, 40,15%, 60,34%, 68,12% до 80,92% соответственно. Кроме того, была определена хелатирующая активность экстракта Fe +2 за счет участия этого металла в образовании радикалов внутри человеческого организма. Как показано на рис. 2d, хелатирующая способность полисахаридов составляла 10,11%, 25,48%, 39,09%, 46,72% и 52,27% на уровне 100, 150, 200, 250 и 300 мкг / мл соответственно, что свидетельствует о сильном сродстве связывания с ион. Кроме того, для определения восстанавливающей способности RualaCap был проведен анализ феррицианида / берлинской синей, где полисахариды проявляли умеренную способность превращать Fe +3 в Fe +2 (рис.2д). При концентрациях 500, 1000 и 1500 мкг / мл восстанавливающая сила составляла 0,19, 0,31 и 0,45, которая постепенно повышалась до 0,6 и 0,74 при дозах 2000 и 2500 мкг / мл. Наконец, была определена общая антиоксидантная активность, и результат показал, что восстанавливающая способность 1 мг экстракта эквивалентна 1,47 мкг аскорбиновой кислоты.

Таблица 2 Антиоксидантная активность холодного щелочного экстрагированного сырого полисахарида, RualaCap, выделенного из Russula alatoreticula . Рисунок 2

Антиоксидантная активность холодного щелочного экстрагированного сырого полисахарида, RualaCap, полученного из Russula alatoreticula .( a ) Активность по улавливанию гидроксильных радикалов ( b ) Активность по улавливанию радикалов DPPH ( c ) Активность по улавливанию радикалов ABTS ( d ) Хелатирующая способность иона двухвалентного железа ( e ) Снижающая способность.

До настоящего времени многочисленные исследования продемонстрировали антиоксидантную активность in vitro , проявляемую полисахаридом из диких съедобных грибов. В отличие от этого, имеется ограниченная информация о биоактивности Russula sp, которая составляет одну из крупнейших и основных групп эктомикориз, распространенных во всем мире.Однако сравнительное исследование с доступными доказательствами показало, что изучаемая фракция R . alatoreticula продемонстрировал лучшую восстанавливающую способность и хелатирующий эффект, чем неочищенный, а также чистый полисахарид из Russula virescens 21 . Кроме того, RualaCap также продемонстрировал улучшенные свойства улавливания радикалов DPPH и ABTS, чем чистый полисахарид из Russula griseocarnosa 22 . Недавно Лю и др. . 23 сообщили об антиоксидантной активности водорастворимых и щелочнорастворимых полисахаридов из Russula vinosa , и результаты показали, что он хуже улавливает гидроксильные радикалы, снижает силу и хелатирующий эффект, чем RualaCap.Кроме того, было доказано, что исследуемый экстракт обладает лучшей восстанавливающей способностью и эффектом гашения радикалов ABTS, чем неочищенный полисахарид, экстрагированный щелочью из R . senecis 3 . Напротив, фракция проявляла меньшую активность, чем чистый полисахарид из R . albonigra , кроме анализа хелатирующей способности 19 . Более того, горячей водой экстрагируют полисахарид из R . alatoreticula , Русалан, обладает более высокими антиоксидантными свойствами, чем его полисахаридная фракция, обработанная щелочью, RualaCap 1 .

Определение иммуностимулирующей активности RualaCap

Влияние на пролиферацию и фагоцитоз клеток RAW 264.7

Макрофаги являются ключевым участником врожденного иммунитета, поскольку они фагоцитируют чужеродные частицы и секретируют основные модуляторы, активирующие адаптивный ответ. Таким образом, увеличение их количества и способности поглощения может положительно способствовать большему количеству медиаторов и уничтожению патогенов, что приводит к выраженной активации механизма защиты хозяина 8,24 .Поэтому для определения иммуностимулирующего эффекта оценивали влияние RualaCap на мышиные макрофаги, RAW 264.7, жизнеспособность и фагоцитарное поглощение. Как и ожидалось, полисахарид усиливал обе активности, причем эффективность была даже выше, чем у стандартного липополисахарида (ЛПС). Фракция проявляла свой эффект в течение 24 ч обработки, где она показывала максимальную функцию только при концентрации 50 мкг / мл. Через 48 часов частота пролиферации увеличилась на 159,83%, 144,65% и 124,22% при лечении 50, 100 и 200 мкг / мл RualaCap соответственно (рис.3а). В то время как фагоцитоз увеличился на 120,02%, 108,88% и 96,94% на этих тестируемых уровнях (рис. 3b) (см. Также дополнительный рис. S1). Обзор литературы показал, что исследуемая фракция проявляла лучшую пролиферативную активность, чем чистый полисахарид из R . griseocarnosa 25 и более низкий фагоцитарный эффект, чем фракция углеводов, экстрагированных горячей водой из R . alatoreticula 1 .

Рис. 3

Влияние холодного щелочного экстрагированного сырого полисахарида RualaCap, выделенного из Russula alatoreticula , на активность макрофагов.( a ) Пролиферацию контролировали с использованием водорастворимого тетразолия (WST) при обработке полисахарида при различных концентрациях и времени и выражали в отношении (%) к отрицательному контролю. ( b ) Отношение фагоцитоза (%) к контролю определяли методом нейтрального красного. (c ) Высвобождение NO в супернатанте клеток количественно оценивали с использованием реагента Грисса. ( d ) Генерацию внутриклеточных ROS определяли с помощью проточной цитометрии (см. Также дополнительный рисунок S2).Во всех пробах. ЛПС в концентрации 5 мкг / мл использовали в качестве положительного контроля. Результаты представляют собой среднее значение ± стандартное отклонение по крайней мере трех независимых экспериментов. ANOVA p <0,05; Что касается апостериорного теста Тьюки, знак «*» указывает на значительные различия по сравнению с необработанной контрольной группой. * p <0,05, ** p <0,01, *** p <0,001.

Влияние на продукцию NO и внутриклеточный синтез АФК

Во время фагоцитоза АФК в форме супероксидного радикала вырабатываются как часть окислительного взрыва, который помогает в уничтожении внутриклеточных паразитов.Второй окислитель, синтезируемый макрофагами, – это NO, который обладает микробицидным действием за счет прямой атаки на бактерии, вирусы и простейшие. В мышиных системах NO продуцируется iNOS, активированным за счет синергетического эффекта IFN-γ и TNF 26 . Таким образом, увеличение продукции этих многофункциональных молекул может быть одной из возможных целей иммуномодуляции в макрофагах. Интересно, что RualaCap стимулировал усиленное производство NO и ROS в течение 24 часов лечения. Результаты показали, что при концентрациях 50, 100 и 200 мкг / мл полисахарид индуцировал 19.Образование NO 16, 27,04 и 20,07 мкМ соответственно (рис. 3c). В то время как фракция в этих дозах увеличивала синтез АФК на 105,84%, 114,99% и 126,54% по сравнению с необработанными клетками (рис. 3d) (см. Также дополнительный рис. S2). Следовательно, исследуемая фракция проявляла лучшую активность в этих аспектах, чем неочищенный полисахарид, экстрагированный щелочью из R . senecis 3 .

Обнаружение морфологических изменений макрофагов

При активации морфология макрофагальных клеток изменяется от общей круглой формы до более специфической дендритной структуры.Такое изменение помогает им стать антигенпредставляющими клетками для наивных Т-лимфоцитов во время первичного иммунного ответа 27 . Эти активированные моноциты затем характеризуются рядом тонких пластин с краев клеток, называемых филоподиями или ламеллиподиями 28 . Таким образом, чтобы исследовать влияние RualaCap на архитектуру макрофагов, клетки обрабатывали фракцией в различных дозах. Как показано на фиг. 4, полисахариды, а также LPS индуцировали морфодинамику в клетках RAW 264.7, включая заметное увеличение размера, количества и разрастания клеток по сравнению с необработанным набором.Кроме того, RualaCap также стимулировал образование множества волосков, подобных выступам мембраны, и эффект был более выраженным при лечении концентрацией 100 мкг / мл. Было обнаружено, что видимые результаты соответствуют нашим предыдущим работам 1,3 .

Рис. 4

Влияние холодного щелочного экстрагированного сырого полисахарида, RualaCap, выделенного из Russula alatoreticula , на морфологию макрофагов. Клетки инкубировали в течение 24 ч с различными концентрациями экстракта, где в качестве положительного контроля использовали ЛПС на уровне 5 мкг / мл.После этого клетки фиксировали, подвергали флуоресцентной микроскопии и снимали изображения. ( a ) Отрицательный контроль ( b ) LPS (c) 50 мкг / мл ( d ) 100 мкг / мл ( e ) 200 мкг / мл.

Измерение экспрессии генов и выяснение механизма действия

За последнее десятилетие большое количество исследований показали, что TLR играют важную роль в защите хозяина и среди различных типов TLR-2, а также TLR-4 являются основными. лучше всего охарактеризован. После связывания со специфическими лигандами оба TLR запускают нижестоящий сигнальный каскад, который включает стимуляцию общего набора белков, наиболее значимым из которых является активация NF-κB 29 .Затем NF-κB связывается со своими консенсусными последовательностями промоторной ДНК и запускает экспрессию целевых генов, таких как TNF-α, iNOS, COX-2, Iκ-Bα, IFN-γ и т. Д. 30,31,32,33,34, 35 . TNF-α является одним из первых провоспалительных цитокинов, синтезируемых макрофагами, которые, в свою очередь, индуцируют продукцию других медиаторов. Напротив, экспрессия iNOS приводит к продукции NO, как упоминалось ранее, а избыточная продукция NO дополнительно стимулирует синтез COX-2 36 . Однако постоянное высвобождение провоспалительных цитокинов вызывает пагубный эффект, и, таким образом, продукция противовоспалительного модулятора, такого как IL-10, необходима во время иммунного ответа 8 .

Таким образом, чтобы определить, выполняет ли RualaCap свою функцию с помощью этих про- и противовоспалительных модуляторов, были изучены экспрессии мРНК всего девяти генов. Результаты показали, что после инкубации с полисахаридами в течение 24 часов транскрипция всех исследуемых генов была значительно повышена по сравнению с отрицательным контролем (рис. 5) (см. Также дополнительный рис. S3). Результат был дополнительно подтвержден с помощью qRT-PCR, и общий анализ транскриптома показал, что экстракт в концентрации 100 мкг / мл обладал наилучшим стимулирующим эффектом.В этой дозе RualaCap индуцировал экспрессию TLR-2, iNOS, Iκ-Bα, TNF-α и IL-10 в 1,77, 2,83, 2,14, 1,77 и 4,96 раза соответственно (рис. 6a-e). Интересно, что общий эффект оказался весьма сопоставимым с LPS, отражающим эффективный иммуностимулирующий потенциал RualaCap.

Фигура 5

Влияние холодного щелочного экстрагированного сырого полисахарида, RualaCap, полученного из Russula alatoreticula , на экспрессию мРНК. Полную РНК выделяли из клеток макрофагов после 24 ч инкубации либо с LPS (концентрация 5 мкг / мл), либо с RualaCap (концентрация 50, 100 и 200 мкг / мл) вместе с необработанными клетками.кДНК была приготовлена ​​из соответствующих образцов РНК, и была проведена полуколичественная ПЦР с обратной транскриптазой для анализа экспрессии семи различных генов, таких как TLR-2, TLR-4, NF-κB, COX-2, iNOS, Iκ-Bα и IFN- γ, где β-актин рассматривался как ген домашнего хозяйства. Полноразмерные изображения геля представлены на дополнительном рисунке S4.

Рис. 6

Анализ механизма действия неочищенного полисахарида, извлеченного холодной щелочью, RualaCap, полученного из Russula alatoreticula. ПЦР в реальном времени была применена для количественного определения уровня экспрессии пяти генов ( a ) TLR-2 ( b ) iNOS ( c ) Iκ-Bα ( d ) TNF-α ( e ) IL -10. Значения были представлены как среднее ± стандартное отклонение по крайней мере трех независимых экспериментов. ANOVA p <0,05; Что касается апостериорного теста Тьюки, знак «*» указывает на значительные различия по сравнению с необработанной контрольной группой. ** p <0,01, *** p <0.001. ( f ) На схематической диаграмме представлена ​​иммуностимулирующая активность RualaCap, опосредованная посредством пути TLR / NF-κB. Фракция полисахарида, обогащенная β-глюканом, действует как лиганд для TLR2 и TLR4 и, следовательно, активирует нижестоящий сигнальный путь. В результате стимулируется фактор транскрипции NF-κB, который впоследствии связывается с промоторной областью ряда генов, что приводит к синтезу важных медиаторов. Эти медиаторы играют важную роль в активации адаптивного иммунного ответа и, таким образом, усиливают общий механизм защиты хозяина.

С древних времен многие высшие грибы базидиомицетов использовались в этнической медицине благодаря усилению иммунитета, которое в наши дни приписывают β-глюкану. Грибковый β-глюкан, в отличие от α-связанного глюкана, не переваривается ферментами человека при пероральном введении. Вместо этого они попадают в тонкий кишечник и стимулируют систематический иммунный ответ 37 . Хотя механизм в настоящее время начал выясняться, исследования, проведенные до настоящего времени, показали, что β-глюкан распознается рецепторами макрофагов, такими как TLR-2/4, и индуцирует сигнальный каскад 38 .Однако имеется скудная информация, объясняющая механизм действия, лежащий в основе иммуностимулирующей активности многих традиционно используемых грибов, включая Russula sp. Недавно Чен и др. . 25 показали, что очищенный полисахарид из R . griseocarnosa регулирует иммунную активность посредством путей NF-κB и MAPK. Кроме того, в наших предыдущих работах, R . alatoreticula 1 и R . senecis 3 продемонстрировали свои иммунологические функции, которым способствуют несколько цитокинов; хотя основной путь остается анонимным.Таким образом, настоящее исследование может считаться важным, поскольку оно проливает свет на понимание механизма изученного народного гриба (рис. 6f).

Таким образом, мы представляем биоактивную фракцию RualaCap, выделенную с использованием остатков процесса горячей воды, чтобы расширить применение этнически ценимого мико-корма, R . alatoreticula . Неочищенный полисахарид проявлял эффективный антиоксидантный потенциал, где значения EC 50 были в порядке хелатирующей способности Fe 2+ > улавливание радикалов ABTS> восстанавливающая сила> ингибирование гидроксильных радикалов> DPPH . Закалочная активность. Кроме того, также наблюдался заметный иммуностимулирующий эффект, что отражалось в увеличении клеточного деления, способности поглощения, образования филоподий и уровня про- (TNF-α, COX-2, IFN-γ, iNOS, NO, ROS). как противовоспалительные (IL-10) медиаторы макрофагами. Подробное исследование показало, что эта функция опосредована посредством TLR2 и TLR4, активирующих путь NF-κB. Такое терапевтическое усиление можно объяснить присутствием β-глюкана, обнаруживаемого как заметный компонент во фракции.Таким образом, результаты могут привести к дальнейшему развитию RualaCap в качестве средства для улучшения здоровья, вызванного окислительным стрессом, и улучшения целостности нашей иммунной системы, особенно против состояния иммунодефицита.

Октябрьский вид грибов: Охра хрупкая (Russula ochroleuca)

Казалось бы, довольно легко распознать различные виды в пределах рода R ussula или brittlegills, яркие маленькие грибочки, которые активно появляются по всей стране в последние несколько месяцев.Их яркие цвета шляпок сразу же выделяют их среди опавших осенних листьев, окружающих основания деревьев, с которыми они образуют микоризные отношения. в то время как их общие черты позволяют относительно легко разместить их в этой широкой группе. Все они особенно склонны к крошению и разрушению при неосторожном обращении, и у всех есть белые или слегка не совсем белые стебли, жабры и мякоть, часто обнаженные под отверстиями, оставленными в их ярких кутикулах колпачка при поедании лесных существ.

Однако

Russulas может сводить с ума, если вы относитесь к числу тех, кто хочет более точно определить свои находки. Род состоит из постоянно расширяющегося и, казалось бы, бесконечного множества видов, у которых очевидные видимые особенности, такие как цвет шляпки, играют лишь частичную роль в идентификации. Название может происходить от латинского слова «красный», но существует множество других оттенков: пурпурный, зеленый, серый, желтый и множество промежуточных оттенков.

Russula silvestris (возможно)

Одно раннее руководство для обычного натуралиста, The Observer’s Book of Common Fungi (1954) Э.М. Уэйкфилд заметил, что «виды, которых много (в Великобритании около семидесяти), не так хорошо разграничены», перечислив лишь пять общих примеров. На сайте First Nature есть несколько десятков фотографий, описания отличительных черт и другая интересная информация. Недавние размышления миколога Николаса Мани для неспециализированного читателя, Mushrooms (2011), утверждают, что существует «750 из них, все с белыми жабрами, но с колпачками всех цветов радуги», в то время как Джеффри Кибби The Genus Russula в Великобритании «Синоптические ключи к видам» (издание 2014 г.) предоставляет средства для идентификации «почти 160 видов, которые можно найти в Великобритании».Хотя книга Кибби является лучшей из доступных для британских микологов, можно предположить, что его книга не станет последним словом по этому вопросу.

Порошкообразный ломкий жир (Russula parazurea)

Среда обитания, конечно же, важный фактор. Небольшой гриб с красной шляпкой, который вы могли найти, вряд ли окажется буковым Sickener ( R. nobilis ), если он никогда не был рядом с буком. Если среди хвойных пород, это может быть простой Sickener ( Russula emetica ).Однако Habitat заходит так далеко в предоставлении окончательных подсказок, потому что, если привести лишь один из многих возможных примеров, это может быть Russula silvestris , которая растет «отдельными или разбросанными группами на почве под широколистными и редко , хвойные деревья », как описывает Майкл Джордан в своей книге« Энциклопедия грибов Британии и Европы ». Автор также описывает этот последний вид как «бледно-розовый или более темный вишнево-красный», но даже для тех, кто более ценит цвет среди нас, явно может быть некоторое совпадение с «алым или вишнево-красным», которое он описывает для двух других, особенно в приглушенном свете леса, будь то темная область бука или меняющаяся цветовая температура, связанная с другими лесными средами…

Следует упомянуть, что я сосредоточился только на этих трех видах красного или красноватого Russula , чтобы избежать ненужной путаницы.В этой области цветового спектра мы также можем найти Rosy Brittlegill ( R. rosea ), Bloody Brittlegill ( R. sanguinaria ), Primrose Brittlegill ( R. sardonia , ошибочно названный из-за желтоватого оттенка. до его жабр) и многие, многие другие без общеупотребительных английских названий, такие как R. atrorubens (красный, но более темный в центре шляпки).

Вероятно, Russula atrorubens из-за более темного центра плаща, который был покусан, чтобы обнажить белую мякоть под

И давайте даже не будем вдаваться в сложный вопрос настроек баланса белого, фильтров и цифровой обработки цвета, если вы пытаетесь изобразить конкретный образец в точности «как есть» на фотографии.Есть множество серых и других мутных не совсем белых Russulas , которые так же сбивают с толку. Самым известным из них является Charcoal Burner ( R. cyanoxantha ), но он никогда не бывает фиксированным чистым серым и часто отображает спектр нижележащих оттенков, которые можно преувеличить или преуменьшить в Photoshop. Пэт О’Рейли в описании этого вида в «Первой природе» описывает его кепку как «смесь фиолетового, коричневого, желтого, синего, серого – всех оттенков, видимых при горении древесного угля», в то время как Джордан говорит, что колпачок варьируется от «зеленого до фиолетового».Между тем, мелкий пыльный налет на крышке очень похожего сине-серого R. parazurea – самый надежный ключ к идентификации Powdery Brittlegill.

Это аналогичная проблема с цветом жабр, мякоти и спор, все из которых значительно колеблются в пределах параметров «белый, не совсем», с изменением цвета различных видов с синяками, трещинами, окислением и другими возрастными повреждениями. Специалисты по Brittlegill, такие как Кибби, предлагают сделать отпечатки спор, оставив колпачок лицевой стороной вниз на ночь, а затем соскребая споры вместе, чтобы можно было получить некую критическую массу, чтобы определить, являются ли они чисто-белыми или просто «беловатого» цвета, как кремовый или бледный лосось. .

На нижней стороне видны хрупкие жабры порошкообразной хрупкой жабры (Russula parazurea)

Поскольку цвет вряд ли является надежной основой для идентификации, какие еще факторы мы можем использовать? Размер, может быть? Возвращаясь к нашим маленьким красным, мы видим, что Джордан перечисляет колпачок Beechwood Sickener как 3-9 см, Sickener как 3-10 см и Russula silvestris как 2,5-6 см – ничто из этого не поможет, если ваш образец подходит для например, 5 см или где-нибудь еще в пределах этих средних диапазонов.Мы могли бы законно спросить, кто так или иначе собрал данные для этих размеров, и задать аналогичные вопросы о размерах стебля и, даже о тех, кто достаточно предан своему делу, чтобы добраться до микроскопического уровня, о перекрытии между различными размерами спор разных видов.

А вот

Russula довольно интересна под микроскопом. Споры имеют узловатые, ребристые или бородавчатые выступы, при этом этот орнамент формирует узоры или сети, которые могут помочь в процессе идентификации. Николас Мани в книге Mushrooms упоминает, что еще в 1930 году было составлено целое исследование The Spore Ornamentation of Russulas , содержащее исчерпывающую серию иллюстраций некоего Р.Кроушей.

Споры сыроежки неизвестной

Тем не менее, даже при максимальных уровнях оптического увеличения (1000-кратное увеличение) может быть трудно увидеть детали достаточно четко без помощи специальных химических реагентов, чтобы выявить особенности. Ах, химикаты, да … Подробнее об этом чуть позже.

Сама мякоть также очень интересна под микроскопом, поскольку эти грибы Russula образованы не из более длинных более волокнистых клеток, чем плодовые тела других видов грибов, а из крупных сферических клеток, называемых сфероцистами, придающих им текстуру Филлипса. описывается как «гранулированный».Вот почему они ломаются более чисто, чем другие грибы, и это объясняется логикой названия «хрупкая жабра». (Общее семейство Russulaceae также включает другой род наряду с Russula. Это Lactarius, или молочные шапки, которые также состоят из сфероцист, но выделяют молочный латекс, когда их жабры сломаны). Степень изгиба жабр до того, как они сломаются, является еще одним признаком, используемым для идентификации различных видов, как и степень, в которой цветная кожа на верхней поверхности шляпки может быть снята.Кутикула Beechwood Sickener ( R. nobilis ) отслаивается только на 1/3 к центру, как сообщает O’Reilly на First Nature, в то время как кутикула Sickener ( R. emetica ) отслаивается более чем на 2/3 к центру. центр. Нет никаких упоминаний о том, как далеко отслаивается R. silvestris .

Сломанные жабры и шелушащаяся кутикула подозреваемого в Oilslick Brittlegill (Russula ionochlora)

Может быть, наша чрезмерная человеческая зависимость от зрения и осязания среди других органов чувств поможет нам только с идентификацией Russula .Среди заядлых микологов немало тех, кто предлагает откусить от ваших открытий в поисках новых ключей. Главное здесь – попробовать , чтобы не проглотить , а сразу выплюнуть. Если такие распространенные названия, как Sickener (или даже латинское «emetica») не сделали это до боли очевидным, то большинство Russula не считается хорошей едой. Цитируя общую работу Джеффри Кибби « Грибы и поганки: полевой справочник » (1979), они «могут быть очень горячими на вкус в сыром виде.Очень немногие виды ядовиты, хотя некоторые из них плохо перевариваются или вызывают рвоту при употреблении в пищу в больших количествах ».

Пролистывая около дюжины страниц книги O’Reilly Fascinated by Fungi [https://www.first-nature.com/books/fungi2.php], мы видим вкусы различных видов животных, описываемые как «умеренные». »Через« очень едкий »или« горький и острый »до« очень острый »в случае Beechwood Sickener и« очень острый и острый »для Sickener. Степень перца или едкости, конечно, невозможно измерить объективно, но можно также обратиться за помощью к своему органу обоняния: Purple Brittlegill ( R.atropurpurea ) по общему мнению пахнет «слабым, яблоком», в то время как Crab Brittlegill ( R. xerampelina ) имеет запах «вареного краба» – хотя многие грибы с возрастом становятся немного рыбными для моего нетренированного носа.

Сломанные хрупкие жабры охры хрупкой жабры, которые что-то грызло или грызло крошечным шаром земли у основания

Что такое вкус и запах, кроме показателей химического состава? Именно здесь Russulas отделяет овец от коз, так как наиболее усердные охотники за грибами редко ступают в лес без своих принадлежностей в виде специальных ножей и ручных линз, подкрепленных химическим арсеналом сульфата железа, аммиака, гидроксида калия и других растворов. реагируют, окрашивая мякоть конкретных видов в разные цвета.

Все это может показаться невероятно устрашающим, но я думаю, что большинство из нас было бы вполне удовлетворено, зная, нашли ли мы только общий Russula или нет, и оставим все как есть. В конце концов, что такое общее название или латинская номенклатура, как не созданная руками человека указательная ссылка на то, что по сути является конкретной биохимической структурой плодовых тел определенных видов грибов?

Russula Навыки идентификации накапливались и оттачивались в течение многих лет, и, признаться, лично мне не хватает терпения.Однако, если вам посчастливилось найти одного из редких людей, которые переняли эти экспертные знания, и подарить им образец (или его фотографию), они часто просто инстинктивно знают, что у вас есть, как знают о хорошей дыне. Имея это в виду, я хотел бы дать быстрый совет различным членам группы Facebook Британского микологического общества, в частности самому Джеффри Кибби и Энди В целом, которые самоотверженно указали на наиболее вероятную идентификацию для различных фотографий на этом пост месяца.

А пока я номинирую на октябрьский ежемесячный гриб единственную Russula , которую я могу с уверенностью идентифицировать в своих местных лесах, – охристую британку ( Russula ochroleuca ), также известную как обыкновенная желтая Russula (из-за нее невероятно распространены в Великобритании и имеют желтый цвет). Хотя многие русулы растут поодиночке или небольшими группами, этот обычно в больших количествах встречается в смешанных лесных массивах, и единственное, с чем вы его можете спутать, – это желто-болотный ломкохвостый ( R.Claroflava ), который имеет более липкую, более ярко-желтую крышку и находится на более влажной почве.

Несколько заключительных замечаний относительно съедобности: хотя многие сыроежки просто обожгут вам рот, есть число, которое указано как съедобное, из которых Ochre Brittlegill является одним, но по моему собственному опыту, он такой водянистый, несущественный и безвкусный, зачем беспокоиться?

Охра хрупкая

В самом деле, я так думаю о многих грибах, но особенно об этой группе, потому что многие выглядят очень похожими, и любая небольшая генетическая вариация может иметь серьезные последствия для тех, кто их ест.Я упомянул об этом, недавно прочитав книгу Money Mushroom , потому что мы не только знаем, что грибы могут накапливать токсины из окружающей среды (кто знает, что может содержаться в химических стоках сельскохозяйственных удобрений, которые просочились в грунтовые воды, например ), но локализованные сообщества грибов, похоже, развивают свои собственные особенности в отношении химического состава, токсичность которого может быть непредвиденным побочным продуктом.

Деньги указывает, что «маловероятно, что какие-либо грибные токсины направлены против нас», но упоминает ряд конкретных случаев отравления в последние годы от Желтого Рыцаря ( Tricholoma equestre ), вида, не относящегося к Russula, считающегося хорошим для употребления в пищу. на протяжении многих веков – и неподготовленному глазу его можно было бы принять за Охру Бриттлжабр, если бы не его желтые, а не белые жабры.Он утверждает, что могут быть региональные различия в токсичности этого конкретного вида из-за эволюции различных генетических штаммов в разных местах.

Leave a comment

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *